Ludzkie koronawirusy - autor: Krzysztof Pyrć z Zakładu Mikrobiologii, Wydział Biochemii, Biofizyki i Biotechnologii, Uniwersytet Jagielloński, Kraków

Chcesz wydać pracę habilitacyjną, doktorską czy monografię? Zrób to w Wydawnictwie Borgis – jednym z najbardziej uznanych w Polsce wydawców książek i czasopism medycznych. W ramach współpracy otrzymasz pełne wsparcie w przygotowaniu książki – przede wszystkim korektę, skład, projekt graficzny okładki oraz profesjonalny druk. Wydawnictwo zapewnia szybkie terminy publikacji oraz doskonałą atmosferę współpracy z wysoko wykwalifikowanymi redaktorami, korektorami i specjalistami od składu. Oferuje także tłumaczenia artykułów naukowych, skanowanie materiałów potrzebnych do wydania książki oraz kompletowanie dorobku naukowego.

Poniżej zamieściliśmy fragment artykułu. Informacja nt. dostępu do pełnej treści artykułu tutaj
© Borgis - Nowa Pediatria 2/2011, s. 28-31
*Dariusz Boruczkowski1, Katarzyna Pawelec2, Anna Pieczonka3, Piotr Michalski4
Krew pępowinowa. Część druga – teraźniejszość
Cord blood. Part two – the present
1NZOZ – Polski Bank Komórek Macierzystych w Warszawie
Kierownik: dr n. biol. Tomasz Ołdak
2Katedra i Klinika Pediatrii, Hematologii i Onkologii Warszawskiego Uniwersytetu Medycznego
Kierownik: prof. dr hab. Michał Matysiak
3Polski Bank Komórek Macierzystych S.A. w Warszawie
Prezes Zarządu: Jakub Baran
4Szpital Ginekologiczno-Położniczy Ujastek w Krakowie
Dyrektor Szpitala: dr Jan Kosacz
Summary
The first report about haematopoietic stem cells transplantation from cord blood with good result, was published in 1989. Since then, the major changes have occurred, based on scientific and technical developments and umbilical cord blood (CB) banks have been established in six continents. Since the first CB transplantation, more than 21 000 transplantations have been reported worldwide and more than 1 000 000 cord blood units (CBUs) have been stored in more than 100 CB banks. Results and the courses of CBUs transplantations in malignant and nonmalignant diseases, in adults and children, show, in comparison with others stem cells sources (bone marrow and mobilized peripheral blood), that CB has several advantages, including prompt availability of the transplant, decrease of Graft versus Host Disease and better long-term immune recovery resulting in a long-term survival. Today developments still want improve on engraftment, by i.e. ex vivo expansion of stem cells, intrabone injection of CB cells and double/simultaneous CB transplantations.
In addition to hematopoietic stem cells, cord blood and especially placenta contain a large number of nonhematopoietic (mesenchymal) stem cells. Today, after over twenty years standards use of hematopoietic stem cells and shorter use of mesenchymal stem cells, the articles describing medical application of both kinds of cells, confirm the possibility of more and more diseases treatment and in the absence of ethical concern, the unlimited supply of mesenchymal cells explains the increasing interest of using cord blood for developing regenerative medicine.
Następne przeszczepienia krwiotwórczych komórek macierzystych z PBKM S.A.
Od przesłania do redakcji pierwszej części artykułu (1) w listopadzie 2010 roku, przez następne cztery miesiące, do marca 2011 roku PBKM S.A. i jeden z współtworzących podlegającą PBKM, europejską grupę banków krwi pępowinowej (FamiCord) Krio – Instytut (Węgry), przekazały do leczenia dzieci następne dwie porcje allogenicznych preparatów krwi pępowinowej (KP). Piąta transplantacja KP została przeprowadzona w Miszkolcu. Była to pierwsza na Węgrzech transplantacja allogenicznej KP. Transplantacja KP od młodszej siostry w tym przypadku dotyczyła dziewczynki z ostrą białaczką limfoblastyczną, u której ze względu na powtarzające się od momentu rozpoznania zakażenia, nie można było prowadzić należnego leczenia. Szósta transplantacja odbyła się 7 stycznia 2011 roku w Katedrze i Klinice Transplantacji Szpiku, Onkologii i Hematologii Dziecięcej Akademii Medycznej we Wrocławiu. Biorczynią była dziewczynka leczona z powodu niedokrwistości Fanconiego. W dniu transplantacji lekarze uzupełnili brakującą ilość komórek, pobierając szpik od zgodnego młodszego brata, od którego została wcześniej pobrana KP. Obydwie pacjentki zostały po transplantacji w stanie klinicznym dobrym zwolnione do domu. Aktualnie (marzec 2011) PBKM przygotowuje się do przekazania następnych jednostek krwi pępowinowej do przewidywanych dwóch transplantacji krwi pępowinowej.
Przykłady zwiększania liczby krwiotwórczych komórek macierzystych z krwi pępowinowej
Najprawdopodobniej pierwsze próby leczniczego przetaczania oraz przechowywania KP zostały opisane w 1939 roku (2, 3). Kilka lat później próbowano zastosować KP w leczeniu braku miesiączki (4). Jednak pierwszą udaną transplantację KP przeprowadzono dopiero w 1988 roku (5), a już od początku lat dziewięćdziesiątych ubiegłego wieku (6) zaczęto zdawać sobie sprawę z ograniczeń ilościowych tego źródła krwiotwórczych komórek macierzystych (KKM). Badania laboratoryjne (7, 8) trwały do roku 1999, kiedy to najprawdopodobniej po raz pierwszy (9) odbyło się równoczesne (w tym samym dniu) przeszczepienie namnożonych odpowiednio wcześniej przed transplantacją i nienamnożonych KKM z KP. Dodatkowo, opisana metoda została przeprowadzona po raz pierwszy, w przeciwieństwie do wcześniej stosowanej metody polegającej na przetoczeniu w dniu transplantacji części komórek, a po 10-12 dniach po pierwszym przetoczeniu, namnożonych KKM w warunkach laboratoryjnych. Już w roku 2000 przeprowadzono prawdopodobnie pierwsze przeszczepienie KKM z KP wyłącznie namnożonych przez 12 dni poprzedzających transplantację, przy użyciu urządzenia o nazwie Aastrom Replicell System (10). Namnożone odpowiednio wcześniej komórki przetoczono dwojgu pacjentom z przewlekłą białaczką szpikową, dla których nie znaleziono dawcy rodzinnego lub niespokrewnionego. Korzystając z możliwości namnażania komórek macierzystych, w roku 2003 opisano grupę 27 pacjentów (11) z chorobami nowotworowymi i nienowotworowymi, którym przetaczano komórki w dwóch porcjach. W dniu „0” – komórki, które nie podlegały żadnej manipulacji oraz w dniu +12 komórki namnażane od dnia transplantacji w warunkach laboratoryjnych. Rok później opisano komórki (CD45-) ludzkiej krwi pępowinowej, które namnażane poza organizmem (ekspansja do ilości 1015) różnicowały się w komórki tkanki nerwowej (mózgu), kości, chrząstki, wątroby i mięśnia sercowego (12). Innym przykładem dotyczącym pośredniego uzupełnienia liczby KKM są m.in. włosko-szwedzkie badania (13) dotyczące namnażania przed transplantacją KP dodatkowych komórek pochodzących ze szpiku rodziców. Być może następną możliwością skrócenia okresu odnowy układu krwiotwórczego po transplantacji będzie podawanie KP nie dożylnie, tylko bezpośrednio do kości talerza biodrowego (14). Według autorów bezpośrednie podawanie KP do kości powoduje 100% przyjęć przeszczepionego materiału, szybsze dojrzewanie i różnicowanie się przeszczepionych komórek, krótszy czas odnowy układu krwiotwórczego oraz zredukowaną ilość przypadków GvHD. Poza tym, również w Polsce, w przypadku ciężkiego pacjenta można przeszczepiać jednocześnie dwie jednostki KP (15).
Mezenchymalne komórki macierzyste

Powyżej zamieściliśmy fragment artykułu, do którego możesz uzyskać pełny dostęp.

Płatny dostęp do wszystkich zasobów Czytelni Medycznej

Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu oraz WSZYSTKICH około 7000 artykułów Czytelni, należy wprowadzić kod:

Kod (cena 30 zł za 30 dni dostępu) mogą Państwo uzyskać, przechodząc na tę stronę.
Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.

Piśmiennictwo
1. Boruczkowski D, Pawelec K, Michalski P: Krew pępowinowa. Część pierwsza – przeszłość. Nowa Pediatria 2010; 4: 121-123. 2. J. Halbrecht: Transfusion with placental blood. Lancet 1939; 233: 202-203. 3. J. Halbrecht: Fresh and stored placental blood. Lancet 1939; 234: 1263-1265. 4. J. Halbrecht: Placental blood in the treatment of amenorrhoea. Lancet 1941; 238: 630. 5. Gluckman E et al.: Haematopoietic reconstitution in a patient with Fanconis anaemia by means of umbilical cord blood from an HLA identical sibling. N Eng J Med 1989; 321: 1174-1178. 6. Broxmeyer HE et al.: Growth characteristics and expansion of human umbilical cord blood of its potential for transplantation in adults. Proc Natl Acad Sci 1992; 89: 4109-4113. 7. Koller MR et al.: Clinical-scale human umbilical cord blood cell expansion in a novel automated perfusion culture system. Bone Marrow Transplant 1998; 21: 653-663. 8. Capmany G et al.: Short-term, serum-free, static culture of cord blood – derived CD34+ cells: Effects of FLT3-L and MIP-1 alpha on in vitro expansion of hematopoietic progenitor cells. Haematologica 1999; 84: 675-682. 9. Kögler G et al.: Simultaneous cord blood transplantation of ex vivo expanded together with non-expanded cells for high risk leukemia. Bone Marrow Transplant 1999; 24: 397-403. 10. Pecora A et al.: Prompt and durable engraftment in two older adult patients with high risk chronic myelogenous leukemia (CML) using ex vivo expanded and unmanipulated unrelated umbilical cord blood. Bone Marrow Transplant 2000; 25: 797-799. 11. Jaroscak J et al.: Augmentation of umbilical cord blood (UCB) transplantation with ex vivo – expanded UCB cells: results of a phase 1 trial using the AastromReplicell System. Blood 2003; 101: 5061-5067. 12. Kögler G et al.: A new Human Somatic Stem Cell from Placental Cord Blood with Intrinsic Pluripotent Differentiation Potential. J Exp Med 2004; 200: 123-135. 13. Galski H et al.: A novel MDR-dependent pharmacological approach for ex-vivo expansion of haematopoetic stem cells from human cord blood. Bone Marrow Transplant 2007; 39: 126-127. 14. Raiola AM et al.: Direct intra – bone marrow transplant of cord blood cells: a way to overcome delayed engraftment in adult patients. Bone Marrow Transplant 2007; 39: S31. 15. Jędrzejczak W et al.: Simultaneous transplantation of two allogeneic units of cord blood in an adult patient with acute myeloblastic leukemia. A case report. Arch Immunol Ther Exp 2005; 53: 364-368. 16. Rogers I et al.: Identification and analysis of in vitro cultured CD45-positive cells capable of multi lineage differentiation. Exp Cell Res 2007; 313: 1839-1852. 17. Koc O, Lazarus HM: Mesenchymal Stem Cells: heading into the clinic. Bone Marrow Transplant 2001; 27: 235-239. 18. McGuckin CP et al.: Umbilical cord blood stem cells can expand hematopoietic and neuroglial progenitors in vitro. Exp Cell Res 2004; 295: 350-359. 19. Kucia M, Halasa M, Wysoczyński M: Morphological and molecular characterization of novel population of CXCR4+ SSEA-4+ Oct-4+ very small embryonic-like cells purified from human umbilical cord blood – preliminary report. Leukemia 2007; 21: 297-303. 20. Deans RJ, Moseley AM: Mesenchymal stem cells: biology and potential clinical uses. Exp Hematol 2000; 28: 875-884. 21. Barry F et al.: SH-3 and SH-4 antibodies recognized distinct epitopes on CD73 from human mesenchymal stem cells. Biochem Biophys Res Commun 2001; 289: 519-524. 22. Barry FP et al.: The monoclonal antibody SH-2, raised against human mesenchymal stem cells, recognizes an epitope on endoglin (CD105). Biochem Biophys Res Commun 1999; 265: 134-139. 23. Tse WT et al.: Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells: implications in transplantation. Transplantation 2003; 75: 389-397. 24. Krampera M et al.: Bone marrow mesenchymal stem cells inhibit the response of naive and memory antigen-specific T-cells to their cognate peptide. Blood 2003; 101: 3722-3729. 25. Maitra B et al.: Human mesenchymal stem cells support unrelated donor hematopoietic stem cells and suppress T-cell activation. Bone Marrow Transplanta 2004; 33: 597-604. 26. Meisel R et al.: Human bone marrow stromal cells inhibit allogeneic T-cell responses by indoleamine 2,3-dioxygenase-mediated tryptophan degradation. Blood 2004; 103: 4619-4621. 27. Aggarwal S, Pittenger MF: Human mesenchymal stem cells modulate allogeneic immune cell responses. Blood 2005; 105: 1815-1822. 28. Le Blanc K, Ringden O: Immunobiology of human mesenchymal stem cells and future use in hematopoietic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant 2005; 11: 321-334. 29. Klopp AH et al.: Concise review: Dissecting a discrepancy in the literature: do mesenchymal stem cells support or suppress tumor growth? Stem Cell 2011; 29: 11-19. 30. Mitchell KE et al.: Matrix cells from Wharton’s jelly form neurons and glia. Stem Cells 2003; 21: 50-60. 31. Weiss ML et al.: Human umbilical cord matrix stem cells: preliminary characterization and effect of transplantation in a rodent model of Parkinson’s disease. Stem Cells 2006; 24: 781-792. 32. Karahuseyinoglu S et al.: Biology of the stem cells in human umbilical cord stroma: in situ and in vitro surveys. Stem Cells 2007; 25: 319-331. 33. Prasanna SJ et al.: Pro-inflammatory cytokines, IFNgamma and TNFalpha, influence immune properties of human bone marrow and Wharton jelly mesenchymal stem cells differentially. PLoS One 2010; 5(2): 9016. 34. Fausto N, Campbell JS: The role of hepatocytes and oval cells in liver regeneration and repopulation. Mech Dev 2003; 120: 117-130. 35. Austin TW, Lagasse E: Hepatic regeneration from hematopoietic stem cells. Mech Dev 2003; 120: 131-135. 36. Yoon B-I, Choi Y-K, Kim D-Y: Differentiation processes of oval cells into hepatocytes: proposals based on morphological and phenotypical traits in carcinogen – treated hamster liver. J Comp Pathol 2004; 131: 1-9. 37. McGuckin CP et al.: Production of stem cells with embryonic characteristics from human umbilical cord blood. Cell Prolif 2005; 38: 245-255. 38. Berger MJ et al.: Differentiation of umbilical cord blood-derived multilineage progenitor cells into respiratory epithelial cells. Cytotherapy 2006; 8: 480-487. 39. Denner L et al.: Directed engineering of umbilical cord blood stem cells to produce C-peptide and insulin. Cell Prolif 2007; 40: 367-380. 40. Hussain MA, Theise ND: Stem-cell therapy for diabetes mellitus. Lancet 2004; 364: 203-205. 41. Haller MJ et al.: Autologous umbilical cord blood infusion for type 1 diabetes. Exp Hematol 2008; 36: 710-715. 42. Starski E et al.: Alleviation of exogenous insulin requirement in type 1 diabetes mellitus after immunoablation and transplantation of autologous hematopoietic stem cells. Pol Arch Med Wewn 2009; 119: 422-426. 43. Badiavas E et al.: Participation of bone marrow derived cells in cutaneous wound healing. J Cell Physiol 2003; 196: 245-250. 44. Valbonesi M et al.: Cord blood stem cells for wound repair. Preliminary report of 2 cases. Transfus Apher Sci 2007; 30: 153-156. 45. Germain L et al.: Reconstructed Human Cornea Produced in vitro by Tissue Engineering. Pathobiology 1999; 67: 140-147. 46. Burt RK et al.: High-dose immune suppression and autologous hematopoietic stem cell transplantation in refractory Crohn disease. Blood 2003; 101: 2064-2066. 47. Machiarini P et al.: Clinical transplantation of a tissue-engineered airway. Lancet 2008; 372: 2023-2030. 48. Gratwohl A et al.: The EBMT activity survey 2008 impact of team size, team density and new trends. Bone Marrow Transplant 2011; 46: 174-191.
otrzymano: 2011-03-23
zaakceptowano do druku: 2011-05-06

Adres do korespondencji:
*Dariusz Boruczkowski
NZOZ – Polski Bank Komórek Macierzystych S.A.
ul. Grzybowska 2/41, 00-131 Warszawa
tel./fax: (22) 436-40-49
tel./fax: (22) 436-40-50
e-mail: dariusz.boruczkowski@pbkm.pl

Nowa Pediatria 2/2011
Strona internetowa czasopisma Nowa Pediatria