© Borgis - Medycyna Rodzinna 1/2015, s. 23-27
Tomasz Czekaj, Marcin Ciszewski
Klebsiella pneumoniae NDM – nowa superbakteria
Klebsiella pneumoniae NDM – new emerging superbacteria
Zakład Mikrobiologii Farmaceutycznej i Diagnostyki Mikrobiologicznej, Uniwersytet Medyczny w Łodzi
Summary
Klebsiella pneumoniae are Gram-negative opportunistic bacteria which constitutes a natural part of the physiological flora of skin, oral cavity and intestines. In immunocompromised patients, this species can cause severe infections, including urinary tract infections, pneumonia, hepatitis, sepsis, soft tissue infections and peritonitis. Nosocomial pneumonia caused by K. pneumoniae constitutes approximately 10% of all hospital-acquired infections in the European Union countries, whereas nosocomial urinary tract infections approximately 8.8% and bacteremia approximately 8.7%. It is prevalent for Klebsiella pneumoniae to exhibit resistance to penicillins. An ESBL mechanism (extended-spectrum beta-lactamases) might also emerge among these bacteria manifesting additional resistance to cephalosporins and monobactams, but usually maintaining susceptibility to cephamycins and carbapenems. Carbapenemase-producing strains have been observed too. The most dangerous mechanism of antibiotic resistance is NDM-1 (New Delhi metallo-beta-lactamase-1). Such strains are resistant to beta-lactam antibiotics and carbapenems. Due to its emerging antibiotic resistance, virulence and limited therapeutic options Klebsiella pneumoniae bacteria are a major threat to public health in the forseeable future.
Bakterie z gatunku Klebsiella pneumoniae należą do Gram-ujemnych pałeczek jelitowych z rodziny Enterobacteriaceae. Jest to gatunek dobrze poznany i często stanowi fizjologiczną florę jelitową człowieka. Po raz pierwszy został opisany jako przyczyna zapalenia płuc w roku 1882 (1). Może wywoływać zakażenia oportunistyczne, w tym szpitalne. Klebsiella pneumoniae to bakterie względnie beztlenowe, a więc wyrastające w warunkach tlenowych, ale także beztlenowych, prowadząc wówczas metabolizm fermentacyjny. Podczas wzrostu na podłożach stałych przyjmują postać dużych, szarych i błyszczących kolonii. Szczepy K. pneumoniae subsp. pneumoniae (pałeczki zapalenia płuc) są najczęściej izolowanymi w Polsce pośród gatunków z rodzaju Klebsiella (ok. 95% izolatów) (2). Bakterie tego gatunku mogą być obecne także w środowisku, m.in. w wodzie, ściekach, glebie i roślinach (3). Nie jest to drobnoustrój patogenny wyłącznie wobec ludzi, odnotowywano także infekcje u różnych gatunków zwierząt, zarówno dzikich, jak i domowych (4-6).
Do najistotniejszych czynników chorobotwórczości K. pneumoniae należy zaliczyć otoczkę (7), lipopolisacharyd (LPS) i białkowe receptory ściany komórkowej. Czynniki te warunkują zarówno adhezję do komórek gospodarza, jak i chronią przed odpowiedzią ze strony układu immunologicznego człowieka (2, 8). Szczepy K. pneumoniae izolowane z przypadków klinicznych wykazują znaczne zróżnicowanie pod względem genetycznym, co ma przełożenie na zróżnicowanie ich potencjału chorobotwórczego (3). W celu identyfikacji bakterii gatunku K. pneumoniae, a także typowania szczepów najbardziej chorobotwórczych, opracowano liczne metody genetyczne oparte na technice multiplex-PCR, zmierzające do wykrycia genów kodujących czynniki chorobotwórczości, a także do określenia serotypu otoczki (9, 10).
Klebsiella pneumoniae może stanowić składnik fizjologicznej flory bakteryjnej przewodu pokarmowego, ale także skóry i jamy ustnej, zwłaszcza wśród personelu medycznego. U osób z upośledzoną odpornością gatunek ten może wywoływać zakażenia o ciężkim przebiegu, m.in. infekcje dróg moczowych (11, 12), zapalenia płuc (13, 14), wątroby (15), posocznicę (16), zakażenia tkanek miękkich (17) i zapalenie otrzewnej (18).
Niezwykle istotnym problemem są zakażenia szpitalne K. pneumoniae. W środowisku szpitalnym bakterie te nie tylko zyskują szansę na swobodne rozprzestrzenianie się i infekowanie pacjentów o obniżonej odporności, ale także na pozyskiwanie genów, np. w drodze poziomego transferu materiału genetycznego (ang. horizontal gene transfer – HGT), kodujących czynniki chorobotwórczości, a także warunkujących lekooporność. W takich warunkach istnieje największe ryzyko selekcji szczepów wieloopornych. Według Raportów Epidemiologicznych Unii Europejskiej zapalenia płuc wywoływane w warunkach szpitalnych przez K. pneumoniae stanowią średnio ok. 10% wszystkich zakażeń szpitalnych w państwach UE, szpitalne zakażenia dróg moczowych tym drobnoustrojem – średnio 8,8%, a zakażenia krwi spowodowane przez K. pneumoniae to średnio 8,7% wszystkich zakażeń szpitalnych w Unii Europejskiej. Według tego samego raportu, w Polsce odsetek wieloopornych szczepów Klebsiella pneumoniae wynosi pomiędzy 25 a 50%, co stanowi jeden z najwyższych wyników w Europie – dla porównania ten odsetek w Szwecji wynosi ok. 2% (19).
Bakterie Klebsiella pneumoniae zazwyczaj są oporne na penicyliny, bowiem wytwarzanie beta-laktamaz kodowane jest przez geny znajdujące się na obecnych w komórce plazmidach. Niekiedy jednak, najprawdopodobniej w drodze wymiany materiału genetycznego, wykształcany jest mechanizm ESBL (ang. extended-spectrum beta-lactamase), a więc zdolność do wytwarzania beta-laktamaz o poszerzonym spektrum działania. Takie szczepy są wówczas oporne na penicyliny, cefalosporyny i monobaktamy, zazwyczaj zachowując wrażliwość na cefamycyny i karbapenemy (20). Charakterystykę fenotypową oraz genotypową szczepów K. pneumoniae wykazujących mechanizm oporności ESBL opisano w wielu krajach, m.in. w Polsce (21), Niemczech (22), Macedonii (23) oraz w Arabii Saudyjskiej (24).
Mechanizmem oporności występującym coraz częściej wśród szczepów K. pneumoniae jest wytwarzanie karbapenemaz. Enzymy te mają zdolność do deaktywacji penicylin, cefalosporyn oraz karbapenemów. Zazwyczaj zachowana pozostaje wrażliwość na monobaktamy. Szczepy wykazujące taki mechanizm oporności (nazwany KPC – ang. K. pneumoniae carbapenemase) scharakteryzowano m.in. w Polsce (25, 26), Turcji (27) i we Włoszech (28). Dotychczas zidentyfikowano 16 różnych genów kodujących karbapenemazy u K. pneumoniae. Obiektem najszerszych badań są obecnie KPC-2 i KPC-3, kodowane przez geny blaKPC-2 i blaKPC-3 (29).
Powyżej zamieściliśmy fragment artykułu, do którego możesz uzyskać pełny dostęp.
Mam kod dostępu
- Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu albo wszystkich artykułów (w zależności od wybranej opcji), należy wprowadzić kod.
- Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.
- Aby kupić kod proszę skorzystać z jednej z poniższych opcji.
Opcja #1
24 zł
Wybieram
- dostęp do tego artykułu
- dostęp na 7 dni
uzyskany kod musi być wprowadzony na stronie artykułu, do którego został wykupiony
Opcja #2
59 zł
Wybieram
- dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
- dostęp na 30 dni
- najpopularniejsza opcja
Opcja #3
119 zł
Wybieram
- dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
- dostęp na 90 dni
- oszczędzasz 28 zł
Piśmiennictwo
1. Friedlander C: Uber die scizomyceten bei der acuten fibrosen pneumonie. Arch Pathol Anat Physiol Klin Med 1882; 87: 319-324. 2. Szewczyk EM: Diagnostyka bakteriologiczna. Wyd. II, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2013: 146-147. 3. Azu G, Brisse S, Verhoef J: Phylogenetic diversity of Klebsiella pneumoniae and Klebsiella oxytoca clinical isolates revealed by randomly amplified polymorphic DNA, gyrA and parC genes sequencing and automated ribotyping. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 2001; 51: 915-924. 4. Osman KM, Hassan HM, Orabi A, Abdelhafez AS: Phenotypic, antimicrobial susceptibility profile and virulence factors of Klebsiella pneumoniae isolated from buffalo and cow mastitic milk. Pathog Glob Health 2014; 108: 191-199. 5. APHA Disease surveillance report. Klebsiella pneumoniae infection causes mastitis in pigs. Vet Rec 2014; 175: 617-620. 6. Pilo P, Vogt D, Origgi FC et al.: First Report of a Multidrug-Resistant Klebsiella pneumoniae of Sequence Type 11 Causing Sepsis in a Free-Ranging Beaver (Castor fiber). Environ Microbiol Rep 2014 [Epub]. 7. Takade A: Fine Structures of the Capsules of Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli K1. Journal of bacteriology 1988; 170: 4960-4902. 8. Li B, Zhao Y, Liu C et al.: Molecular pathogenesis of Klebsiella pneumoniae. Future Microbiol 2014; 9: 1071-1081. 9. Chen Z, Liu M, Cui Y et al.: A novel PCR-based genotyping scheme for clinical Klebsiella pneumoniae. Future Microbiol 2014; 9: 21-32. 10. Compain F, Babosan A, Brisse S et al.: Multiplex PCR for detection of seven virulence factors and K1/K2 capsular serotypes of Klebsiella pneumoniae. J Clin Microbiol 2014; 52: 4377-4380. 11. Lee CY, Tsai HC, Lee SJ, Chen YS: Concomitant emphysematous prostatic and periurethral abscesses due to Klebsiella pneumoniae: a case report and review of the literature. Southeast Asian J Trop Med Public Heal 2014; 45: 1099-1106. 12. Van Duin D, Cober E, Richter SS et al.: Impact of therapy and strain type on outcomes in urinary tract infections caused by carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae. J Antimicrob Chemother 2014 [Epub]. 13. Khadanga S, Karuna T, Thatoi PK, Behera SK: Changing bacteriological profile and mortality trends in community acquired pneumonia. J Glob Infect Dis 2014; 6: 186-188. 14. Zhang Y, Yao Z, Zhan S et al.: Disease burden of intensive care unit-acquired pneumonia in China: a systematic review and meta-analysis. Int J Infect Dis 2014; 29: 84-90. 15. Luo Y, Wang Y, Ye L, Yang J: Molecular epidemiology and virulence factors of pyogenic liver abscess causing Klebsiella pneumoniae in China. Clin Microbiol Infect 2014; 20: 818-824. 16. Haque SM, Jahan N, Mannan MA et al.: Identification of bacterial isolates in neonatal sepsis and their antimicrobial susceptibility. Mymensingh Med J 2014; 23: 709-714. 17. Drieux L, Decrè D, Mèzière A: Klebsiella pneumoniae necrotizing fasciitis of the leg in an elderly French woman. Clin Interv Aging 2014; 9: 1171-1174. 18. Lin WH, Tseng CC, Wu AB et al.: Clinical and microbiological characteristics of peritoneal dialysis-related peritonitis caused by Klebsiella pneumoniae in southern Taiwan. J Microbiol Immunol Infect 2013 [Epub]. 19. European Centre for Disease Prevention and Control. Annual epidemiological report. Reporting on 2011 surveillance data and 2012 epidemic intelligence data 2013. ECDC, Stockholm 2013. 20. Patterson JE: Extended-spectrum beta-lactamases. An overview. Postgrad Med 2001; 109: 32-38. 21. Sacha P, Jakoniuk P, Wieczorek P, Żórawski M: Mechanizmy oporności na antybiotyki β-laktamowe izolatów Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis i Enterobacter cloacae opornych na cefotaksym. Now Lek 2007;76: 314-321. 22. Lübbert C, Straube L, Stein C et al.: Colonization with extended-spectrum beta-lactamase-producing and carbapenemase-producing Enterobacteriaceae in international travelers returning to Germany. Int J Med Microbiol 2014 [Epub]. 23. Kaftandzieva A, Trajkovska-Dokic E, Kotevska V et al.: Genotypes of ESBL producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae in relation to resistance to antimicrobial drugs. Prilozi 2014; 35: 31-38. 24. Ahmad S, Abulhamd A: Phenotypic and molecular characterization of nosocomial K. pneumoniae isolates by ribotyping. Adv Med Sci 2014; 60: 69-75. 25. Zacharczuk K, Piekarska K, Szych J et al.: Emergence of Klebsiella pneumoniae coproducing KPC-2 and 16S rRNA methylase ArmA in Poland. Antimicrob Agents Chemother 2011; 55: 443-446. 26. Baraniak A, Izdebski R, Herda M et al.: Emergence of Klebsiella pneumoniae ST258 with KPC-2 in Poland. Antimicrob Agents Chemother 2009; 53: 4565-4567. 27. Labarca J, Poirel L, Ozdamar M et al.: KPC-producing Klebsiella pneumoniae, finally targeting Turkey. New Microbe New Infect 2014; 2: 50-51. 28. Monaco M, Giani T, Raffone M et al.: Colistin resistance superimposed to endemic carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae: a rapidly evolving problem in Italy, November 2013 to April 2014. Eurosurveillance 2014; 19: 20939. 29. Wang D, Chen J, Yang L et al.: Phenotypic and enzymatic comparative analysis of the KPC variants, KPC-2 and its recently discovered variant KPC-15. PLoS One 2014; 9: e111491. 30. Yong D, Toleman MA, Giske CG et al.: Characterization of a new metallo-beta-lactamase gene, bla(NDM-1), and a novel erythromycin esterase gene carried on a unique genetic structure in Klebsiella pneumoniae sequence type 14 from India. Antimicrob Agents Chemother 2009; 53: 5046-5054. 31. Poirel L, Hombrouck-Alet C, Freneaux C et al.: Global spread of New Delhi metallo-β-lactamase 1. Lancet Infect Dis 2010; 10: 832. 32. Kumarasamy KK, Toleman MA, Walsh TR et al.: Emergence of a new antibiotic resistance mechanism in India, Pakistan, and the UK: a molecular, biological, and epidemiological study. Lancet Infect Dis 2010; 10: 597-602. 33. Nordmann P: Carbapenemase-producing Enterobacteriaceae: overview of a major public health challenge. Mèdecine Mal Infect 2014; 44: 51-56. 34. Reactgroup.org. OTC Rules for antibiotic sales implemented in India [Internet] [cited 2015 Jan 16]. Available from: http://www.reactgroup.org/news/385/18.html. 35. Rolain JM, Parola P, Cornaglia G: New Delhi metallo-beta-lactamase (NDM-1): towards a new pandemia? Clin Microbiol Infect 2010; 16: 1699-1701. 36. Muir A, Weinbren MJ: New Delhi metallo-beta-lactamase: a cautionary tale. J Hosp Infect 2010; 75: 239-240. 37. Fiett J, Baraniak A, Izdebski R et al.: The first NDM metallo-β-lactamase-producing Enterobacteriaceae isolate in Poland: evolution of IncFII-type plasmids carrying the bla(NDM-1) gene. Antimicrob Agents Chemother 2014; 58: 1203-1207. 38. Konsultant Krajowy w dziedzinie mikrobiologii lekarskiej. Ostrzeżenie: Rozprzestrzenianie się oporności na karbapenemy u pałeczek jelitowych w Polsce. 2013. 39. Ministerstwo Zdrowia. Zalecenia dotyczące postępowania w przypadku identyfikacji w podmiotach wykonujących działalność leczniczą szczepów bakteryjnych Enterobacteriaceae wytwarzających karbapenemazy typy KPC, MBL lub OXA-48. 2012.
