Grażyna Bodalska1, Karolina Kłosowska-Buryło2, Monika Birska2, *Katarzyna Karłowicz-Bodalska3
Mikrobiota jelitowa jako wsparcie terapii cukrzycy typu 2
Gut microbiota as support for type 2 diabetes therapy
1Wydział Lekarski, Uniwersytet Medyczny im. Piastów Śląskich we Wrocławiu
Dziekan Wydziału: dr hab. n. med. Robert Zymliński, prof. UMW
2Wydział Farmaceutyczny, Uniwersytet Medyczny im. Piastów Śląskich we Wrocławiu
Dziekan Wydziału: dr hab. Marcin Mączyński, prof. UMW
3Katedra i Zakład Technologii Postaci Leku, Wydział Farmaceutyczny, Uniwersytet Medyczny im. Piastów Śląskich we Wrocławiu
Kierownik Katedry: dr hab. n. farm. Bożena Karolewicz, prof. UMW
Streszczenie
Cukrzyca typu 2 (T2DM) uznana jest za chorobę cywilizacyjną, której rozwój w dużej mierze zależy od stylu życia. Głównymi przyczynami epidemii T2DM są: globalny wzrost otyłości, niska aktywność fizyczna, wysokokaloryczna dieta i starzenie się populacji. W niniejszym artykule podsumowano aktualne dane naukowe dotyczące wpływu mikrobioty jelitowej na przebieg T2DM oraz jej potencjalnego wsparcia w leczeniu tej choroby. Opisane są zależności między zmianami w składzie mikroflory jelitowej a rozwojem cukrzycy, w tym mechanizmów, poprzez które mikrobiota wpływa na wrażliwość na insulinę, stan zapalny oraz integralność bariery jelitowej.
Mikroflora jelitowa pełni kluczową rolę w funkcjonowaniu organizmu, a jej zaburzenia są związane ze wzrostem ryzyka rozwoju T2DM. Wykazano, że osoby z T2DM wykazują mniejszą różnorodność mikrobioty, co prowadzi do rozwoju przewlekłego stanu zapalnego oraz występowania insulinooporności. Obecność bakterii, takich jak: Bacteroides, Bifidobacterium, Faecalibacterium, Akkermansia i Roseburia, oraz ich metabolitów, m.in. estrów lub soli krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych (octowego, masłowego, propionowego) poprawia wrażliwość na insulinę. Stwierdzono negatywny wpływ bakterii z grupy Fusobacteria, Ruminococcus i Blautia prowadzący do rozwoju dysbiozy, pogorszenia glikemii oraz wzrostu insulinooporności. Wykazano także, że wsparcie terapii cukrzycowych probiotykami i prebiotykami korzystnie wpływa na mikrobiotę, poprawia równowagę metaboliczną i kontrolę glikemii u pacjentów z T2DM.
Dokonano analizy danych literaturowych pochodzących z baz Scopus, PubMed, Google Scholar, obejmującej lata 2007-2024, dotyczącej wpływu mikrobioty i jej metabolitów na rozwój i ryzyko wystąpienia T2DM.
Summary
Type 2 diabetes mellitus (T2DM) is recognized as a lifestyle-related disease, with its development largely dependent on lifestyle factors. The primary causes of the T2DM epidemic include the global rise in obesity, low physical activity, high-calorie diets, and an aging population. This article summarizes current scientific data regarding the impact of gut microbiota on the progression of type 2 diabetes and its potential role in the treatment of this condition. It describes the associations between alterations in gut microbiota composition and the development of diabetes, including the mechanisms through which microbiota influences insulin sensitivity, inflammation, and intestinal barrier integrity.
Gut microbiota plays a crucial role in the functioning of the body. Its disturbances are linked to the pathogenesis of type 2 diabetes. It has been demonstrated that individuals with T2DM show reduced microbial diversity, leading to the development of chronic inflammation and insulin resistance. Research confirms the influence of gut microbiota and its metabolites on the course of type 2 diabetes, with bacteria such as Bacteroides, Bifidobacterium, Faecalibacterium, Akkermansia, and Roseburia. Conversely, the negative impact of bacteria from the Fusobacteria, Ruminococcus, and Blautia groups has been noted, contributing to dysbiosis, worsening glycemia, and increased insulin resistance. It has also been shown that adjunctive therapy with probiotics and prebiotics can positively influence the microbiota, improving metabolic balance and glycemic control in patients with T2DM.
A literature analysis was conducted, drawing from databases such as Scopus, PubMed, and Google Scholar, covering the years 2007 to 2024, focusing on the impact of microbiota and its metabolites on the development and risk of type 2 diabetes.

Wprowadzenie
Według Światowej Organizacji Zdrowia (World Health Organization – WHO) cukrzyca jest przewlekłą chorobą metaboliczną charakteryzującą się podwyższonym poziomem glukozy we krwi, która z czasem prowadzi do uszkodzenia serca, naczyń krwionośnych, oczu, nerek i nerwów. W ostatnich latach obserwowany jest znaczny wzrost zachorowań na cukrzycę typu 2 (ang. type 2 diabetes mellitus – T2DM). Prognozy Międzynarodowej Federacji Diabetologicznej (International Diabetes Federation – IDF) wskazują, że do 2045 roku 1 na 8 dorosłych, czyli około 783 mln osób, będzie chorować na cukrzycę. Według IDF 10,5% dorosłej populacji w wieku 20-79 lat choruje na cukrzycę, a około 50% nie ma świadomości, że żyje z tą chorobą (1). Dane te dotyczą cukrzycy ogółem, przy czym obecnie 90% przypadków stanowi T2DM.
Mikrobiota jelitowa jest uważana za złożony ekosystem środowiska przewodu pokarmowego, który składa się z bakterii, archeonów, grzybów, wirusów i pierwotniaków (2). Ludzki organizm jest zasiedlony przez około 100 bilionów bakterii, które kolonizują nie tylko jelita, ale również skórę, błony śluzowe narządów płciowych, jamę ustną oraz drogi oddechowe – zarówno górne, jak i dolne. Szczególnie ważną rolę, zwłaszcza z punktu widzenia medycyny, odgrywa mikrobiota jelitowa, która cechuje się największym zróżnicowaniem gatunkowym (3). Mikrobiota jelitowa wpływa na prawidłowe funkcjonowanie ludzkiego organizmu. Zmiany w składzie mikrobioty jelitowej przyczyniają się do patogenezy zaburzeń, takich jak: otyłość, cukrzyca i niewydolność serca, których częstość występowania na świecie wciąż rośnie (4). Stosunek liczebności bakterii Bacteroides do Firmicutes zmienia się w różnych etapach życia człowieka, wzrost liczby Firmicutes może powodować rozwój insulinooporności (ang. insulin resistance – IR) i otyłości (5). Poprzez fermentację błonnika bakterie jelitowe wytwarzają krótkołańcuchowe kwasy tłuszczowe (ang. short-chain fatty acid – SCFA), m.in.: kwas octowy, propionowy, masłowy (6). Mikrobiota jelitowa została uznana za marker chorób metabolicznych, w tym T2DM.
Dysbioza, czyli zaburzenie równowagi mikrobiologicznej jelit, objawia się zmniejszoną różnorodnością bakterii oraz wzrostem liczby mikroorganizmów patogennych. Powiązana jest z rozwojem otyłości i dyslipidemii, indukuje przewlekły stan zapalny niskiego stopnia w jelicie prowadzący do wystąpienia IR i T2DM (6). Przyczyniają się do niej: długotrwała, niezrównoważona dieta, niedobór błonnika oraz spożywanie pokarmów bogatych w tłuszcze i węglowodany proste (7). Probiotyki, czyli żywe, niepatogenne szczepy bakterii o udokumentowanych korzyściach zdrowotnych, wspierają równowagę mikrobioty jelitowej, poprawiają trawienie, wzmacniają układ odpornościowy oraz są stosowane w profilaktyce i wspomagająco w leczeniu zaburzeń metabolicznych, infekcji jelitowych czy stanów zapalnych (8). Na funkcjonowanie i równowagę metaboliczną mikrobioty jelitowej duży wpływ ma stan błony śluzowej jelit. Śluz pokrywający jelita pełni funkcje ochronne, oddziela środowisko światła jelita, ksenobiotyki, od komórek nabłonkowych i odpornościowych gospodarza. Nadmierna degradacja mucyny, składowej śluzu produkowanego przez błonę śluzową jelit, zaburza integralność warstwy błony śluzowej i ułatwia dostęp bakterii i/lub antygenów do komórek nabłonka jelitowego i układu odpornościowego, czego następstwem może być powstanie lub zaostrzenie stanu zapalnego (9). Komórki nabłonka jelitowego wytwarzają białko chemoatraktacyjne (ang. chemoattractant protein) dla makrofagów, które poprzez sygnały przesyłane do komórek układu immunologicznego aktywują układ odpornościowy błony śluzowej jelit. Proces ten powoduje wzrost liczby immunoglobulin A+ w jelitach, oskrzelach i gruczołach sutkowych oraz aktywuje limfocyty T, które rozpoznają antygeny i kierują odpowiedzią immunologiczną poprzez aktywację mechanizmów obronnych organizmu (10, 11). Żywność funkcjonalna podawana jako prebiotyki i/lub probiotyki prowadzi do korzystnych zmian mikrobioty jelitowej w T2DM oraz kontroli glikemii (2, 12). Według Ghorbani i wsp. prebiotyki to niestrawne włókna, które są fermentowane przez mikrobiotę jelitową i korzystnie wpływają na rozwój niektórych bakterii (13). Prebiotyczne węglowodany składają się głównie z inuliny, fruktooligosacharydów oraz galaktooligosacharydów i są odporne na trawienie w jelicie cienkim. Ulegają fermentacji w jelicie grubym i wpływają na rozwój szczepów Bifidobacterium i Lactobacillus (14). Prebiotyki promują eubiozę, łagodzą patologiczne zmiany spowodowane dysbiozą, zwiększają liczebności szczepów Lactobacillus, Bifidobacterium, Faecalibacterium i Bacteroides (15). Wskazuje się na zastosowanie prebiotyków i probiotyków w celu kontroli glikemii u pacjentów ze zdiagnozowaną T2DM (16). Tao i wsp. przeprowadzili metaanalizę oceniającą wpływ suplementacji probiotykami na poziom hemoglobiny glikowanej (ang. glycated haemoglobin A1c – HbA1c), stężenie glukozy we krwi na czczo (ang. fasting blood glucose – FBG) i IR u pacjentów z T2DM. Wyniki wykazały, że probiotyki zawierające m.in. Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus bulgaricus, Lacticaseibacillus rhamnosus, Lactobacillus casei czy Bifidobacterium bifidum obniżały poziom HbA1c, FBG i IR w stosunku do wartości wyjściowych (13). Z kolei badanie przeprowadzone na myszach z T2DM przez Wu i wsp. wykazało, że bakterie L. rhamnosus LRa05 obniżają poziom FBG i IR poprzez regulację składu mikroflory jelitowej (17).
U pacjentów z T2DM zaobserwowano korzystny wpływ suplementacji probiotycznej bakteriami Clostridium coccoides, Clostridium leptum, Akkermansia muciniphila, Faecalibacterium prausnitzii czy Fusobacterium (2) na struktury jelitowe: komórki nabłonka jelitowego i komórki odpornościowe związane z blaszką właściwą, receptory Toll-podobne (ang. toll-like receptors – TLR), które indukują wytwarzanie cytokin i chemokin o aktywności prozapalnej (10).
Mikrobiota u ludzi zdrowych i pacjentów z cukrzycą typu 2
Mikrobiota jelitowa zdrowych osób dorosłych składa się głównie z 6 typów bakterii: Firmicutes, Bacteroidetes, Proteobacteria, Actinobacteria, Fusobacteria i Verrucomicrobia. Obejmuje ona wiele gatunków (około od 500 do 1000), co sprawia, że mikrobiota każdego człowieka jest specyficzna i niepowtarzalna. Różnorodność i homeostaza flory jelitowej ma zasadnicze znaczenie dla utrzymania zdrowia, a dysbioza może przyczyniać się do rozwoju chorób metabolicznych, takich jak otyłość lub cukrzyca. Wyniki badań dotyczących mikrobioty pacjentów z T2DM dowodzą, że do typów bakterii korzystnie wpływających na przebieg T2DM należą: Bacteroides, Bifidobacterium, Faecalibacterium, Akkermansia i Roseburia, natomiast bakterie należące do typu Fusobacteria, Ruminococcus i Blautia niekorzystnie wpływają na przebieg cukrzycy. Zależności te przedstawiono na rycinie 1 (4).

Ryc. 1. Schemat przedstawia wpływ korzystnych i niekorzystnych bakterii jelitowych na przebieg choroby u osób chorych na T2DM. Opracowanie własne na podstawie (4)
Przegląd badań wykazał, że skład i liczebność mikrobioty jelitowej u osób zdrowych znacznie różni się od składu i liczebności mikrobioty jelitowej pacjentów z T2DM. W warunkach fizjologicznych Firmicutes stanowią największą część mikrobioty jelitowej (64%), następnie Bacteroidetes (23%), Proteobacteria (8%) i Actinobacteria (3%) (17). Przeprowadzono badanie z udziałem 30 osób otyłych, w tym 7 cierpiących na T2DM, u których zaobserwowano zmniejszoną liczebność F. prausnitzii – bakterii należących do typu Firmicutes, które naturalnie występują w mikroflorze jelitowej (18). Badanie przeprowadzone przez Larsen i wsp. Potwierdziło zmniejszenie liczebności Firmicutes i Clostridia u pacjentów z T2DM (19). Badanie przeprowadzone w Chinach wykazało, że u pacjentów z T2DM występowały głównie bakterie Escherichia coli, niektóre gatunki Clostridium, Bacteroides caccae i Eggerthella lenta, podczas gdy liczba bakterii produkujących maślan, w tym Eubacterium rectale, Clostridiales sp. SS3/4, F. prausnitzii i Roseburia intestinalis była zmniejszona (20). W badaniu z udziałem europejskich pacjentek z T2DM wykazano zwiększenie liczebności Lactobacillus gasseri, Streptococcus mutans oraz niektórych gatunków Clostridiales i Lactobacillus, zaobserwowano spadek liczebności bakterii produkujących maślan, w tym Roseburia, Eubacterium eligens, Bacteroides intestinalis i niektórych gatunków Clostridium (21).
Badania z udziałem pacjentów ze zdiagnozowaną T2DM wykazały, że liczba bakterii produkujących kwas masłowy u pacjentów z T2DM jest znacznie obniżona w porównaniu z osobami zdrowymi (20). W badaniach na zwierzętach uzyskano podobne wyniki – liczebność bakterii wytwarzających SCFA w modelu T2DM jest znacznie obniżona w porównaniu z grupą kontrolną (22).
Poprzez fermentację błonnika bakterie jelitowe wytwarzają SCFA (m.in. maślan) oraz metabolity, które wpływają na wrażliwość na insulinę. Udowodniono, że spadek stężenia maślanu jest dodatnio skorelowany z cukrzycą, dlatego wzrost liczebności bakterii produkujących maślan lub poprawa zdolności jego syntezy może być skuteczną metodą zapobiegania rozwoju i wspomagania terapii cukrzycy (23). Wykazano, że bakterie produkujące SCFA (głównie Lactobacillus i Bifidobacterium) mogą promować wydzielanie GLP-1 (ang. glucagon-like peptide-1) poprzez regulację aktywności białka GPR43/41 (ang. protein-coupled receptor 43/41) w jelicie, a następnie wydzielanie insuliny indukowane przez GLP-1, co reguluje i kontroluje metabolizm glukozy we krwi (24). Prebiotyki stymulują wytwarzanie maślanu i propionianu, zwiększają uwalnianie hormonów jelitowych (są to tzw. hormony inkretynowe, odpowiedzialne za poposiłkowe wydzielanie insuliny): GLP-1, GIP (ang. glucose-dependent insulinotropic peptide) (25), obniżają uczucie głodu, poprawiają tolerancję glukozy, przyczyniają się do zmniejszenia przyrostu masy ciała (26). Stosowanie probiotyków wpływa na poprawę parametrów glukozy, zwiększa wrażliwość na insulinę i obniżenie poziomu lipidów we krwi (cholesterolu i trójglicerydów), co opóźnia rozwój powikłań T2DM. Efekt wspomagający terapię spowodowany jest zwiększonym stężeniem SCFA, ekspresją klaudyny-1 i mucyny-2, poprawą funkcji bariery jelitowej, zmniejszeniem liczebności bakterii E. coli i lipopolisacharydu (LPS) (6). Zależności te przedstawiono na rycinie 2.

Ryc. 2. Schemat przedstawia wpływ probiotyków i prebiotyków we wsparciu terapii T2DM. Opracowanie własne na podstawie (6)
Badania na zwierzętach potwierdzają, że rodzaj i zróżnicowanie bakterii jelitowych ma wpływ na rozwój cukrzycy. Modyfikacja wytwarzanych bioaktywnych metabolitów, z których najważniejsze to SCFA (octowy, propionowy i masłowy), łagodzą rozwój choroby. Eksperyment na myszach z T2DM poddanych przeszczepowi mikrobioty kałowej (ang. fecal microbiota transplant – FMT) od zdrowych osobników wykazał normalizację poziomu glukozy i insuliny, poprawę funkcji bariery jelitowej, redukcję stanu zapalnego i regulację liczby komórek odpornościowych. Obserwowana poprawa była związana ze zmianami w składzie mikrobioty jelitowej (27). Wyniki innych badań potwierdziły skuteczność metody FMT, wykazały dodatkowo zmniejszenie IR, zwiększenie liczby i hamowanie apoptozy komórek – wysp trzustkowych (28).
Warstwy: śluzowa, naczyniowa i nabłonkowa jelit tworzą barierę oddzielającą jelita od światła przewodu pokarmowego. Śluz jelitowy wytwarzany przez komórki kubkowe stanowi główny element bariery jelitowej i jest niezbędny do obrony ściany jelita przed infekcjami. W jelicie grubym śluz tworzy dwie warstwy – zewnętrzną i wewnętrzną, gdzie osiedlają się bakterie jelitowe (29). Warstwy te zawierają peptydy przeciwdrobnoustrojowe (ang. anti-microbial peptides – AMP), wydzielają IgA, zapewniają dodatkową ochronę przed szkodliwymi mikroorganizmami. Komórki odpornościowe, w tym makrofagi, komórki dendrytyczne i limfocyty obecne w nabłonku jelita, uwalniają AMP, z kolei IgA i cytokiny aktywnie uczestniczą w utrzymywaniu homeostazy immunologicznej jelit. Komórki nabłonka jelit uszczelnione są przez kompleksy połączeń: przylegające, szczelinowe i ścisłe, które dodatkowo umożliwiają komórkom nabłonkowym selektywne wchłanianie związków chemicznych (30, 31).
W eksperymencie z udziałem ludzi dowiedziono, że białko błony zewnętrznej bakterii probiotycznej A. muciniphila (Amuc_1100) zwiększało ekspresję okludyny i białka ścisłego połączenia 1 (ang. tight junction protein-1 – Tjp-1), poprawiało integralność nabłonka jelit, wykazywało hamujący wpływ na receptory kannabinoidowe typu 1 (ang. cannabinoid receptor type 1 – CB1) obecne w jelitach oraz zmniejszało przepuszczalność jelit i ograniczało przenikanie LPS do organizmu (32).
Chelakkot i wsp. w badaniu z udziałem myszy z cukrzycą indukowaną dietą wysokotłuszczową (ang. high-fat diet – HFD) i myszy zdrowych ocenili rolę pęcherzyków zewnątrzkomórkowych pochodzących z A. muciniphila (ang. A. muciniphila-derived extracellular vesicles – AmEV) w regulacji przepuszczalności jelit. Autorzy stwierdzili, że w próbkach kału zdrowych myszy występowała większa liczba AmEV w porównaniu z osobnikami z cukrzycą. Podawanie AmEV poprawiało tolerancję glukozy, funkcję połączeń ścisłych między komórkami jelit, zmniejszało przyrost masy ciała. Wykazano, że AmEV wykazuje aktywność funkcjonalną cząsteczki kontrolującej przepuszczalność jelit oraz udowodniono korzystny wpływ integralności bariery jelitowej na funkcje metaboliczne. Metabolity wytwarzane przez bakterie jelitowe stanowią cel w leczeniu T2DM, a liczne doniesienia naukowe przeprowadzone na modelach zwierzęcych podkreślają ich zalety terapeutyczne (33).
Skład i aktywność drobnoustrojów jelitowych, a także wytwarzane przez nie metabolity (tj. SCFA, LPS, N-tlenek trimetyloaminy) oraz oddziaływania z kwasami żółciowymi mogą znacząco wpływać na rozwój cukrzycy. Powstające SCFA oraz produkty metabolizmu kwasów żółciowych stymulują wydzielanie glukagonopodobnego peptydu 1 (ang. glucagon-like peptide-1 – GLP-1) i insuliny oraz hamują glukoneogenezę (34), poprawiają glikemię i łagodzą rozwój T2DM. Rola SCFA w łagodzeniu objawów T2DM polega na stymulacji wydzielania GLP-1 przez komórki enteroendokrynne. GLP-1 zwiększa wydzielanie insuliny przez komórki β trzustki, chroni je przed apoptozą i wzmaga ich proliferację. Ponadto, SCFA zwiększają ekspresję białek transportujących glukozę do mięśni, co obniża jej poziom we krwi. Zwiększone stężenie aminokwasów rozgałęzionych (ang. branched-chain amino acid – BCAA) zaburza równowagę metaboliczną i jelitową gospodarza. Trimetyloamina, produkt metabolizmu bakterii, przekształcana jest przez enzymy wątrobowe do N-tlenku trimetyloaminy, którego podwyższone poziomy są związane z powstawaniem stanu zapalnego, IR oraz stresem oksydacyjnym. LPS, składnik strukturalny ściany komórkowej bakterii Gram-ujemnych, ma charakter endotoksyny i wykazuje silne powinowactwo do receptorów immunologicznych, m.in. TLR (30). Przyłączanie LPS do TLR na komórkach odpornościowych prowadzi do polaryzacji makrofagów w kierunku fenotypu M1 i wzrostu syntezy cytokin prozapalnych. Wykazano również, że LPS powoduje rozszczelnienie nabłonka jelitowego, upośledzenie tolerancji glukozy i nasilenie IR (35, 36).
Mikrobiota jelitowa u pacjentów z cukrzycą typu 2
W badaniu mikrobioty jelitowej pacjentów z T2DM stwierdzono, że liczebność bakterii klasy Clostridia i typu Firmicutes była znacznie obniżona, podczas gdy liczebność bakterii klasy Betaproteobacteria była wyższa. Ustalono, że stosunek liczebności bakterii typu Bacteroidetes do Firmicutes i stosunek liczby bakterii z rodzajów Bacteroides i Prevotella do C. coccoides i E. rectale korelował ze wzrostem stężenia glukozy w osoczu, co sugeruje, że na przebieg T2DM ma wpływ skład mikrobioty jelitowej (19).
Powyżej zamieściliśmy fragment artykułu, do którego możesz uzyskać pełny dostęp.
Mam kod dostępu
- Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu albo wszystkich artykułów (w zależności od wybranej opcji), należy wprowadzić kod.
- Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.
- Aby kupić kod proszę skorzystać z jednej z poniższych opcji.
Opcja #1
29 zł
Wybieram
- dostęp do tego artykułu
- dostęp na 7 dni
uzyskany kod musi być wprowadzony na stronie artykułu, do którego został wykupiony
Opcja #2
69 zł
Wybieram
- dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
- dostęp na 30 dni
- najpopularniejsza opcja
Opcja #3
129 zł
Wybieram
- dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
- dostęp na 90 dni
- oszczędzasz 78 zł
Piśmiennictwo
1. The International Diabetes Federation (IDF). Diabetes facts and figures. 2024.
2. Zhou Z, Sun B, Yu D i wsp. Gut Microbiota: An Important Player in Type 2 Diabetes Mellitus. Front Cell Infect Microbiol 2022; 12:834485.
3. Rizzatti G, Lopetuso LR, Gibiino G i wsp. Proteobacteria: A Common Factor in Human Diseases. Biomed Res Int 2017; 2017:9351507.
4. Bielka W, Przezak A, Pawlik A. The role of the gut microbiota in the pathogenesis of diabetes. Int J Mol Sci 2022; 23(1):480.
5. Magne F, Gotteland M, Gauthier L i wsp. The firmicutes/bacteroidetes ratio: A relevant marker of gut dysbiosis in obese patients? Nutrients 2020; 12(5):1474.
6. Wang Y, Dilidaxi D, Wu Y i wsp. Composite probiotics alleviate type 2 diabetes by regulating intestinal microbiota and inducing GLP-1 secretion in db/db mice. Biomed Pharmacother 2020; 125:109914.
7. Bibbò S, Ianiro G, Giorgio V i wsp. The role of diet on gut microbiota composition. Eur Rev Med Pharmacol Sci 2016; 20(22):4742-9.
8. Palmnäs-Bèdard MS, Costabile G, Vetrani C i wsp. The human gut microbiota and glucose metabolism: a scoping review of key bacteria and the potential role of SCFAs. Am J Clin Nutr 2022; 116(4):862-74.
9. Pan M, Barua N, Ip M i wsp. Mucin-degrading gut commensals isolated from healthy faecal donor suppress intestinal epithelial inflammation and regulate tight junction barrier function OPEN ACCESS EDITED BY. Front Immunol 2022; 13:1021094.
10. Vitetta L, Gorgani NN, Vitetta G i wsp. Prebiotics progress shifts in the intestinal microbiome that benefits patients with type 2 diabetes mellitus. Biomolecules 2023; 13(9):1307.
11. Maldonado Galdeano C, Cazorla SI, María J i wsp. Beneficial effects of probiotic consumption on the immune system. Review Article Ann Nutr Metab 2019; 74:115-24.
12. Tao Y-W, Gu Y-L, Mao X-Q i wsp. Effects of probiotics on type II diabetes mellitus: a meta-analysis. J Transl Med 2020; 18(1):30.
13. Ghorbani Y, Schwenger KJP, Allard JP. Manipulation of intestinal microbiome as potential treatment for insulin resistance and type 2 diabetes. Eur J Nutr 2021; 60(5):2361-79.
14. Robertson MD. Prebiotics and type 2 diabetes: targeting the gut microbiota for improved glycaemic control? Practical Diabetes 2020; 37(4):133-7.
15. Sharma BR, Jaiswal S, Ravindra PV. Modulation of gut microbiota by bioactive compounds for prevention and management of type 2 diabetes. Biomed Pharmacother 2022; 152:113148.
16. Cunningham AL, Stephens JW, Harris DA. Gut microbiota influence in type 2 diabetes mellitus (T2DM). Gut Pathog 2021; 13(1):50.
17. Wu T, Zhang Y, Li W i wsp. Lactobacillus rhamnosus LRa05 ameliorate hyperglycemia through a regulating glucagon-mediated signaling pathway and gut microbiota in type 2 diabetic mice. J Agric Food Chem 2021; 69(31):8797-806.
18. Frank DN, Amand AL St, Feldman RA i wsp. Molecular-phylogenetic characterization of microbial community imbalances in human inflammatory bowel diseases. Proceedings Nat Acad Sci 2007; 104(34):13780-5.
19. Larsen N, Vogensen FK, Berg FWJ van den i wsp. Gut microbiota in human adults with type 2 diabetes differs from non-diabetic adults. PLoS One 2010; 5(2):e9085.
20. Qin J, Li Y, Cai Z i wsp. A metagenome-wide association study of gut microbiota in type 2 diabetes. Nature 2012; 490(7418):55-60.
21. Karlsson FH, Tremaroli V, Nookaew I i wsp. Gut metagenome in European women with normal, impaired and diabetic glucose control. Nature 2013; 498(7452):99-103.
22. Garcia-Mazcorro JF, Lage NN, Mertens-Talcott S i wsp. Effect of dark sweet cherry powder consumption on the gut microbiota, short-chain fatty acids, and biomarkers of gut health in obese db/db mice. PeerJ 2018; 6:e4195.
23. Zhang L, Chu J, Hao W i wsp. Review article gut microbiota and type 2 diabetes mellitus: Association, mechanism, and translational applications. Mediators Inflamm 2021; 2021:5110276.
24. Aoki R, Kamikado K, Suda W i wsp. A proliferative probiotic Bifidobacterium strain in the gut ameliorates progression of metabolic disorders via microbiota modulation and acetate elevation. Sci Rep 2017; 7(1):43522.
25. Stenman LK, Waget A, Garret C i wsp. Probiotic B420 and prebiotic polydextrose improve efficacy of antidiabetic drugs in mice. Diabetol Metab Syndr 2015; 7:75.
26. Kim YA, Keogh JB, Clifton PM. Probiotics, prebiotics, synbiotics and insulin sensitivity. Nutr Res Rev 2018; 31(1):35-51.
27. Chen L, Guo L, Feng S i wsp. Fecal microbiota transplantation ameliorates type 2 diabetes via metabolic remodeling of the gut microbiota in db/db mice. BMJ Open Diabetes Res Care 2023; 11(3):e003282.
28. Wang H, Lu Y, Yan Y i wsp. Promising treatment for type 2 diabetes: Fecal microbiota transplantation reverses insulin resistance and impaired islets. Front Cell Infect Microbiol 2020; 9:455.
29. Johansson ME V, Sjövall H, Hansson GC. The gastrointestinal mucus system in health and disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2013; 10(6):352-61.
30. Fu Y, Li S, Xiao Y i wsp. A metabolite perspective on the involvement of the gut microbiota in type 2 diabetes. Int J Mol Sci 2023; 24(19):14991.
31. Olivares-Villagómez D, van Kaer L. Intestinal intraepithelial lymphocytes: Sentinels of the mucosal barrier. Trends Immunol 2018; 39(4):264-75.
32. Gurung M, Li Z, You H i wsp. Role of gut microbiota in type 2 diabetes pathophysiology. EBioMedicine 2020; 51:102590.
33. Chelakkot C, Choi Y, Kim D-K i wsp. Akkermansia muciniphila-derived extracellular vesicles influence gut permeability through the regulation of tight junctions. Exp Mol Med 2018; 50(2):e450-e450.
34. Vos WM de, Tilg H, Hul M Van i wsp. Gut microbiome and health: mechanistic insights. Gut 2022; 71(5):1020-32.
35. Vetrani C, Nisio A Di, Paschou SA i wsp. From gut microbiota through low-grade inflammation to obesity: Key players and potential targets. Nutrients 2022; 14(10):2103.
36. Malesza IJ, Malesza M, Walkowiak J i wsp. High-fat, western-style diet, systemic inflammation, and gut microbiota: A Narrative Review. Cells 2021; 10(11):3164.
37. Sanna S, Zuydam NR van, Mahajan A i wsp. Causal relationships among the gut microbiome, short-chain fatty acids and metabolic diseases. Nat Genet 2019; 51(4):600-5.
38. Chen P-C, Chien Y-W, Yang S-C. The alteration of gut microbiota in newly diagnosed type 2 diabetic patients. Nutrition 2019; 63-64:51-6.
39. Chatelier E Le, Nielsen T, Qin J i wsp. Richness of human gut microbiome correlates with metabolic markers. Nature 2013; 500(7464):541-6.
40. Medina-Vera I, Sanchez-Tapia M, Noriega-López L i wsp. A dietary intervention with functional foods reduces metabolic endotoxaemia and attenuates biochemical abnormalities by modifying faecal microbiota in people with type 2 diabetes. Diabetes Metab 2019; 45(2):122-31.
41. Chen L, Liu B, Ren L i wsp. High-fiber diet ameliorates gut microbiota, serum metabolism and emotional mood in type 2 diabetes patients. Front Cell Infect Microbiol 2023; 13:1069954.
42. Panwar H, Calderwood D, Grant IR i wsp. Lactobacillus strains isolated from infant faeces possess potent inhibitory activity against intestinal alpha- and beta-glucosidases suggesting anti-diabetic potential. Eur J Nutr 2014; (7):1465-74.
43. Hsieh M-C, Tsai W-H, Jheng Y-P i wsp. The beneficial effects of Lactobacillus reuteri ADR-1 or ADR-3 consumption on type 2 diabetes mellitus: a randomized, double-blinded, placebo-controlled trial. Sci Rep 2018; 8(1):16791.
44. Kobyliak N, Falalyeyeva T, Mykhalchyshyn G i wsp. Effect of alive probiotic on insulin resistance in type 2 diabetes patients: Randomized clinical trial. Diabetes Metab Syndr 2018; 12(5):617-24.
45. Mobini R, Tremaroli V, Ståhlman M i wsp. Metabolic effects of Lactobacillus reuteri DSM 17938 in people with type 2 diabetes: A randomized controlled trial. Diabetes Obes Metab 2017; 19(4):579-89.
46. Zhang Q, Xiao X, Zheng J i wsp. Featured article: Structure moderation of gut microbiota in liraglutide-treated diabetic male rats. Exp Biol Med 2018; 243(1):34-44.
47. Deng X, Zhang C, Wang P i wsp. Cardiovascular benefits of empagliflozin are associated with gut microbiota and plasma metabolites in type 2 diabetes. J Clin Endocrinol Metab 2022; 107(7):1888-96.
48. Vich Vila A, Collij V, Sanna S i wsp. Impact of commonly used drugs on the composition and metabolic function of the gut microbiota. Nat Commun 2020; 11(1):362.
49. Mueller NT, Differding MK, Zhang M i wsp. Metformin affects gut microbiome composition and function and circulating short-chain fatty acids: A randomized trial. Diabetes Care 2021; 44(7):1462-71.
50. Burton JH, Johnson M, Johnson J i wsp. Addition of a gastrointestinal microbiome modulator to metformin improves metformin tolerance and fasting glucose levels. J Diabetes Sci Technol 2015; 9(4):808-14.
51. Wu H, Esteve E, Tremaroli V i wsp. Metformin alters the gut microbiome of individuals with treatment-naive type 2 diabetes, contributing to the therapeutic effects of the drug. Nat Med 2017; 23(7):850-8.
52. Dikeocha IJ, Al?Kabsi AM, Miftahussurur M i wsp. Pharmacomicrobiomics: Influence of gut microbiota on drug and xenobiotic metabolism. FASEB J 2022; 36(6):e22350.
53. Chang C-J, Lin C-S, Lu C-C i wsp. Ganoderma lucidum reduces obesity in mice by modulating the composition of the gut microbiota. Nat Commun 2015; 6(1):7489.
54. Huang J, Guan B, Lin L i wsp. Improvement of intestinal barrier function, gut microbiota, and metabolic endotoxemia in type 2 diabetes rats by curcumin. Bioengineered 2021; 12(2):11947-58.
55. Zhong Y, Xiao Y, Gao J i wsp. Curcumin improves insulin sensitivity in high-fat diet-fed mice through gut microbiota. Nutr Metab (Lond) 2022; 19(1):76.
56. Xiao Q, Zhong Y, Kang Z i wsp. Curcumin regulates the homeostasis of Th17/Treg and improves the composition of gut microbiota in type 2 diabetic mice with colitis. Phytother Res 2022; 36(4):1708-23.
57. Zhang W, Xu J-H, Yu T i wsp. Effects of berberine and metformin on intestinal inflammation and gut microbiome composition in db/db mice. Biomed Pharmacother 2019; 118:109131.
58. Li M, Zhou W, Dang Y i wsp. Berberine compounds improves hyperglycemia via microbiome mediated colonic TGR5-GLP pathway in db/db mice. Biomed Pharmacother 2020; 132:110953.
59. Zhang Q, Piao X-L, Piao X-S i wsp. Preventive effect of Coptis chinensis and berberine on intestinal injury in rats challenged with lipopolysaccharides. Food Chem Toxicol 2011; 49(1):61-9.
60. Liu D, Zhang Y, Liu Y i wsp. Berberine modulates gut microbiota and reduces insulin resistance via the TLR4 signaling pathway. Experim Clin Endocrinol Diabetes 2018; 126(08):513-20.
61. Wei Y, Yang H, Zhu C i wsp. Hypoglycemic effect of ginsenoside Rg5 mediated partly by modulating gut microbiota dysbiosis in diabetic db/db mice. J Agric Food Chem 2020; 68(18):5107-17.
62. Bai Y, Bao X, Mu Q i wsp. Ginsenoside Rb1, salvianolic acid B and their combination modulate gut microbiota and improve glucolipid metabolism in high-fat diet induced obese mice. PeerJ 2021; 9:e10598.
63. Xu J, Li T, Xia X i wsp. Dietary ginsenoside T19 supplementation regulates glucose and lipid metabolism via AMPK and PI3K pathways and its effect on intestinal microbiota. J Agric Food Chem 2020; 68(49):14452-62.
64. Li E, Long X, Liao S i wsp. Effect of mulberry galacto-oligosaccharide isolated from mulberry on glucose metabolism and gut microbiota in a type 2 diabetic mice. J Funct Foods 2021; 87:104836.
65. Wan M, Li Q, Lei Q i wsp. Polyphenols and polysaccharides from Morus alba L. fruit attenuate high-fat diet-induced metabolic syndrome modifying the gut microbiota and metabolite profile. Foods 2022; 11(12):1818.
66. Vasconcellos AC de, Frazzon J, Zapata Noreña CP. Phenolic compounds present in Yerba Mate potentially increase human health: A critical review. Plant Foods Hum Nutr 2022; 77(4):495-503.
67. Santos D, Vargas BK, Frota EG i wsp. Gut Microbiota Modulation by Bioactive Compounds from Ilex paraguariensis: an In Vivo Study. Plant Foods Hum Nutr 2023; 78(4):796-802.
68. Gupta A, Gupta R, Lal B. Effect of Trigonella foenum-graecum (fenugreek) seeds on glycaemic control and insulin resistance in type 2 diabetes mellitus: a double blind placebo controlled study. J Assoc Physicians India 2001; 49:1057-61.
69. Hannan JMA, Ali L, Rokeya B i wsp. Soluble dietary fibre fraction of Trigonella foenum-graecum (fenugreek) seed improves glucose homeostasis in animal models of type 1 and type 2 diabetes by delaying carbohydrate digestion and absorption, and enhancing insulin action. Br J Nutr 2007; 97(3):514-21.
70. Hamza N, Berke B, Cheze C i wsp. Preventive and curative effect of Trigonella foenum-graecum L. seeds in C57BL/6J models of type 2 diabetes induced by high-fat diet. J Ethnopharmacol 2012; 142(2):516-22.
71. Mitchell CM, Davy BM, Ponder MA i wsp. Prebiotic Inulin Supplementation and Peripheral Insulin Sensitivity in adults at Elevated Risk for Type 2 Diabetes: A Pilot Randomized Controlled Trial. Nutrients 2021; 13(9):3235.
72. Ning C, Wang X, Gao S i wsp. Chicory inulin ameliorates type 2 diabetes mellitus and suppresses JNK and MAPK pathways in vivo and in vitro. Mol Nutr Food Res 2017; 61(8).
73. Okada N, Kobayashi S, Moriyama K i wsp. Helianthus tuberosus (Jerusalem artichoke) tubers improve glucose tolerance and hepatic lipid profile in rats fed a high-fat diet. Asian Pac J Trop Med 2017; 10(5):439-43.
74. Li J, Jia S, Yuan C i wsp. Jerusalem artichoke inulin supplementation ameliorates hepatic lipid metabolism in type 2 diabetes mellitus mice by modulating the gut microbiota and fecal metabolome. Food Funct 2022; 13(22):11503-17.
75. Birsa ML, Sarbu LG. Health Benefits of Key Constituents in Cichorium intybus L. Nutrients 2023; 15(6):1322.
76. Nasimi Doost Azgomi R, Karimi A, Tutunchi H i wsp. A comprehensive mechanistic and therapeutic insight into the effect of chicory (Cichorium intybus) supplementation in diabetes mellitus: A systematic review of literature. Int J Clin Pract 2021; 75(12):e14945.
77. Puhlmann M-L, Jokela R, Dongen KCW van i wsp. Dried chicory root improves bowel function, benefits intestinal microbial trophic chains and increases faecal and circulating short chain fatty acids in subjects at risk for type 2 diabetes. Gut Microbiome 2022; 3:e4.
78. Nishimura M, Ohkawara T, Kanayama T i wsp. Effects of the extract from roasted chicory (Cichorium intybus L.) root containing inulin-type fructans on blood glucose, lipid metabolism, and fecal properties. J Tradit Complement Med 2015; 5(3):161-7.
79. Pourghassem Gargari B, Dehghan P, Aliasgharzadeh A i wsp. Effects of high performance inulin supplementation on glycemic control and antioxidant status in women with type 2 diabetes. Diabetes Metab J 2013; 37(2):140.
80. Ferrare K, Bidel LPR, Awwad A i wsp. Increase in insulin sensitivity by the association of chicoric acid and chlorogenic acid contained in a natural chicoric acid extract (NCRAE) of chicory (Cichorium intybus L.) for an antidiabetic effect. J Ethnopharmacol 2018; 215:241-8.
81. Ghamarian A, Abdollahi M, Su X i wsp. Effect of chicory seed extract on glucose tolerance test (GTT) and metabolic profile in early and late stage diabetic rats. DARU 2012; 20(1):56.