Jestem lekarzem, farmaceutą lub osobą prowadzącą obrót produktami leczniczymi

Ponad 7000 publikacji medycznych!

Artykuły w Czytelni Medycznej o SARS-CoV-2/Covid-19

Poniżej zamieściliśmy fragment artykułu. Informacja nt. dostępu do pełnej treści artykułu
© Borgis - Postępy Fitoterapii 2/2024, s. 54-65 | DOI: 10.25121/PF.2024.25.2.54
*Anna Dziki1, Magdalena Malinowska2, Agnieszka Szopa3, Elżbieta Sikora2
Ekstrakty z szałwii (Salvia officinalis) i szałwii zielonej (Salvia viridis) jako potencjalne składniki aktywne preparatów kosmetycznych
Extracts from sage (Salvia officinalis) and green sage (Salvia viridis) as potential active ingredients for cosmetic preparations
1Katedra Chemii i Technologii Organicznej, Wydział Inżynierii i Technologii Chemicznej, Szkoła Doktorska PK, Politechnika Krakowska im. Tadeusza Kościuszki
Kierownik Katedry: dr hab. Elżbieta Sikora, prof. PK
2Katedra Chemii i Technologii Organicznej, Wydział Inżynierii i Technologii Chemicznej, Politechnika Krakowska im. Tadeusza Kościuszki
Kierownik Katedry: dr hab. Elżbieta Sikora, prof. PK
3Katedra Biotechnologii Roślin i Grzybów Leczniczych, Wydział Farmaceutyczny, Collegium Medicum Uniwersytetu Jagiellońskiego w Krakowie
Kierownik Katedry: prof. dr hab. n. med. Bożena Muszyńska
Streszczenie
Surowce roślinne stanowią bogate źródło związków aktywnych, m.in.: saponin, śluzów, garbników, polifenoli czy olejków eterycznych, które wykazują szerokie spektrum aktywności biologicznej. Szałwia jest surowcem znanym i cenionym od lat. Zarówno ekstrakty z szałwii lekarskiej (Salvia officinalis), jak również z szałwii zielonej (Salvia viridis) znajdują zastosowanie w preparatach kosmetycznych jako źródło substancji biologicznie czynnych. Dzięki zawartości związków z grup polifenoli, terpenów, glikozydów fenolowych, polisacharydów, fitosteroli wykazują działanie przeciwzapalne, przeciwutleniające i przeciwbakteryjne. W artykule przedstawiono nie tylko skład fitochemiczny i aktywność kosmetyczną ekstraktów z szałwii, ale zwrócono szczególną uwagę na nowoczesne metody ich pozyskiwania oraz zastosowanie w preparatach kosmetycznych.
Summary
Plant raw materials are a rich source of active compounds, including saponins, mucilages, tannins, polyphenols, and essential oils, which exhibit a wide range of biological activities. Sage has been a well-known and valued raw material for years. Extracts from both common sage (Salvia officinalis) and green sage (Salvia viridis) are used in cosmetic preparations as a source of biologically active substances.
Due to the presence of polyphenols, terpenes, phenolic glycosides, polysaccharides, and phytosterols they demonstrate anti-inflammatory, antioxidant, and antibacterial properties. This article presents not only the phytochemical composition and cosmetic activity of sage extracts but also highlights modern extraction methods and their application in cosmetic formulations.



Wstęp
Rodzaj Salvia obejmuje wiele gatunków o zróżnicowanym występowaniu geograficznym i szerokim zakresie zastosowań. Na przykład Salvia hispanica L. (chia) pochodzi z Ameryki Środkowej i Południowej i jest szeroko uprawiana ze względu na nasiona bogate w kwasy tłuszczowe omega-3. Salvia miltiorrhiza Bunge (szałwia czerwonokorzeniowa lub Danshen) występuje naturalnie w Azji Wschodniej i jest ceniona w tradycyjnej medycynie chińskiej za korzystne działanie na układ sercowo-naczyniowy. Salvia sclarea L. (szałwia muszkatołowa) występuje w regionie Morza Śródziemnego i jest ceniona ze względu na olejek eteryczny, który znajduje zastosowanie w aromaterapii i perfumerii. Salvia officinalis L. (szałwia lekarska) pochodzi z rejonu Morza Śródziemnego i jest szeroko znana z zastosowań leczniczych i kulinarnych, natomiast Salvia viridis L. (szałwia zielona) jest ceniona głównie jako roślina ozdobna, choć czasami znajduje zastosowanie w medycynie ludowej.
Niniejszy artykuł skupia się szczególnie na S. officinalis i S. viridis. S. officinalis jest oficjalnie wymieniona w Farmakopei Polskiej i Europejskiej jako roślina lecznicza, co podkreśla jej potwierdzony potencjał terapeutyczny. Liście tego gatunku są bogate w związki fenolowe, olejki eteryczne i flawonoidy, które wykazują właściwości przeciwbakteryjne, przeciwutleniające i przeciwzapalne. Dzięki temu stanowi ona obiecujący surowiec w kosmetykach chroniących skórę i wspierających jej regenerację.
Szałwia lekarska od wieków znajduje zastosowanie zarówno w tradycyjnej medycynie, jak i we współczesnej kosmetyce. Jest wartościowym składnikiem preparatów wspomagających leczenie infekcji skórnych i przyspieszających procesy gojenia (1, 2). Badania potwierdzają również, że olejek eteryczny z szałwii skutecznie zwalcza bakterie, takie jak Staphylococcus aureus i Escherichia coli, oraz grzyby, np. Candida albicans (3). Ponadto dzięki wysokiej zawartości polifenoli ekstrakty z szałwii mają silne działanie przeciwutleniające, co pomaga w neutralizowaniu wolnych rodników i chroni komórki przed stresem oksydacyjnym, spowalniając procesy starzenia się skóry (4).
Blisko spokrewniona z szałwią lekarską jest szałwia zielona (S. viridis L., synonim Salvia horminum (L.) Moench) naturalnie występująca w obszarze śródziemnomorskim (5). Choć gatunek ten jest mniej poznany i rzadziej opisywany w literaturze naukowej, jego skład fitochemiczny wskazuje na obecność licznych związków bioaktywnych, takich jak flawonoidy i olejki eteryczne (terpeny, alkohole, estry, fenole, aldehydy, ketony), które mogą wspierać zdrowie skóry oraz pełnić funkcje ochronne. W niniejszej pracy S. viridis została uwzględniona jako jeden z głównych obiektów badań w celu oceny jej potencjału kosmetycznego w porównaniu z dobrze poznaną S. officinalis.
Napar z ziela szałwii ziekonej, kwiatów i liści wykorzystywano do łagodzenia bólu gardła, leczenia stanów zapalnych, skurczów jelit oraz problemów ginekologicznych, a także jako płukankę na ból dziąseł (5). Olejek eteryczny z szałwii zielonej wykazuje podobne właściwości jak olejki innych gatunków, działając przeciwbakteryjnie i przeciwgrzybiczo (2, 6). W kosmetyce naturalnej wyciągi z S. viridis, ze względu na swoje działanie antybakteryjne i przeciwzapalne, są szczególnie cenione w leczeniu stanów zapalnych skóry (2, 7).
Pomimo tego, iż szałwia jest rośliną znaną i stosowaną od tysiącleci, obecny rozwój technologii pozwala na pełniejsze wykorzystanie jej potencjału w nowoczesnych preparatach do stosowania na skórę. Intensywny rozwój technik analitycznych i separacyjnych umożliwia potwierdzenie leczniczego i pielęgnującego działania ekstraktów z szałwii poprzez identyfikację specyficznych związków aktywnych. Co istotne, nowoczesne metody ekstrakcji pozwalają na coraz efektywniejsze pozyskiwanie cennych składników z wyciągów z szałwii, ponadto opracowywane innowacyjne receptury kosmetyczne i systemy nośnikowe umożliwiają skuteczniejsze działanie składników aktywnych.
Niniejsza praca stanowi kompendium najważniejszych informacji związanych w zastosowaniem ekstraktów z szałwii lekarskiej oraz szałwii zielonej w pielęgnacji i ochronie skóry. Uwzględniono zarówno ich skład fitochemiczny, jak i aktywność biologiczną, ze szczególnym naciskiem na właściwości przeciwzapalne, przeciwutleniające i przeciwdrobnoustrojowe. Porównując te dwa gatunki, artykuł ma na celu ocenę ich potencjału jako naturalnych surowców do tworzenia innowacyjnych formulacji kosmetycznych, z uwzględnieniem nowoczesnych metod ekstrakcji oraz możliwości zastosowania w produktach wspierających zdrowie skóry
Metody pozyskiwania ekstraktów z szałwii
Do pozyskiwania ekstraktów z szałwii stosowane są różne rozpuszczalniki, technologie i parametry procesu, co wpływa na skład i jakość uzyskanych produktów. Tradycyjnie w ekstrakcjach rozpuszczalnikowych najczęściej stosowane są jako eluenty: heksan, chloroform, etanol i metanol. Współcześnie jednak unika się toksycznych rozpuszczalników na rzecz bardziej ekologicznych rozwiązań (8, 9). Metody ekstrakcji stosowane w izolacji związków bioaktywnych obejmują klasyczne podejścia. Stosowane są następujące metody: ekstrakcja heksanem (ang. hexane extraction – HEX), ekstrakcja etanolem (ang. ethanol extraction – ETE), hydrodestylacja (ang. hydrodistillation – HD), maceracja konwencjonalna (ang. conventional maceration – CMC) i ekstrakcja Soxhleta (ang. soxhlet extraction – SE), jak również nowoczesne techniki, takie jak: ekstrakcja płynem w stanie nadkrytycznym (ang. supercritical fluid extraction – SFE), ekstrakcja wspomagana mikrofalami (ang. microwave-assisted extraction – MAE), ekstrakcja wspomagana ultradźwiękami (ang. ultrasound-assisted extraction – UAE), ekstrakcja enzymatyczna (ang. enzyme-assisted extraction – EAE), ekstrakcja wspomagana polem elektrycznym (ang. pulsed electric field extraction – PEF), ekstrakcja micelarna wspomagana mikrofalami (ang. microwave-assisted micellar extraction – MME) oraz ekstrakcja w rozpuszczalnikach eutektycznych (ang. natural deep eutectic solvent extraction – NADES) i jej wariant ultradźwiękowy (ang. ultrasound-assisted NADES extraction – UNADE). Każda z tych metod charakteryzuje się zaletami i ograniczeniami, co pozwala na dostosowanie procesu do rodzaju izolowanych substancji oraz wymagań środowiskowych i jakościowych.
HEX oraz ETE to tradycyjne metody stosowane do izolacji substancji lipofilnych i polifenoli. Mimo że nadal są one używane, coraz częściej ustępują miejsca nowoczesnym, ekologicznym metodom, które zmniejszają obciążenie środowiska i poprawiają jakość otrzymanych ekstraktów (10, 11).
Jedną z takich nowoczesnych metod jest SFE, w której wykorzystuje się np. CO2 w stanie nadkrytycznym. Ta technika pozwala na wyizolowanie z materiału biologicznego czystych związków, jak np. karnozol, bez ryzyka degradacji termicznej, co jest szczególnie istotne przy pozyskiwaniu wrażliwych substancji bioaktywnych (2, 12, 13).
Kolejną efektywną metodą jest MAE, która stosuje mikrofale do szybkiego nagrzewania próbki, co znacząco przyspiesza proces i minimalizuje degradację cennych substancji (14, 15).
UAE to przykład nowoczesnej techniki, która wykorzystuje ultradźwięki do rozbijania komórek roślinnych, co zwiększa dostępność związków bioaktywnych i ogranicza ryzyko termicznej degradacji (16, 17).
MME wykorzystuje mikrofale. Pozwala na szybszą i bardziej efektywną ekstrakcję, jednocześnie zachowując stabilność związków wrażliwych na wysoką temperaturę. Użyte w procesie surfaktanty, takie jak: Triton X-100, Tween 20, Tween 80 czy SDS (ang. sodium dodecyl sulfate, dodecylosiarczan sodu), zwiększają skuteczność metody, czyniąc ją ekologiczną poprzez rezygnację ze stosowania toksycznych rozpuszczalników, równocześnie przyczyniając się do bardziej efektywnego pozyskiwania składników aktywnych (18).
Ekstrakcja w aparacie Clevengera to metoda hydrodestylacji stosowana do izolacji olejków eterycznych i lotnych związków z materiałów roślinnych. Polega na ogrzewaniu wody w kolbie destylacyjnej, gdzie para wodna przenosi lotne związki, które następnie kondensują i oddzielają się od wody w rurce Clevengera. Olejki można łatwo zebrać, a woda jest ponownie wykorzystywana, co zwiększa efektywność procesu. Metoda ta jest ceniona z uwagi na zdolność zachowania stabilności termolabilnych związków i prostotę działania (19, 20).
EAE to nowoczesna metoda, która wykorzystuje enzymy do rozkładania błon komórkowych roślin. Enzymy takie jak celulazy czy proteazy pozwalają na zastosowanie łagodniejszych warunków ekstrakcji. To minimalizuje ryzyko degradacji termolabilnych związków bioaktywnych i poprawia ich biodostępność (17, 21).
PEF polega na zastosowaniu krótkich impulsów elektrycznych, które uszkadzają błony komórkowe, zwiększając efektywność ekstrakcji. Jest szczególnie korzystna przy pozyskiwaniu związków wrażliwych na ciepło, gdyż działa w niskich temperaturach (21).
NADES wykorzystuje ekologiczne i biodegradowalne rozpuszczalniki naturalne, takie jak: chlorek choliny, kwas mlekowy, gliceryna, fruktoza, kwas cytrynowy oraz mocznik, które w odpowiednich kombinacjach tworzą skuteczną i bezpieczną alternatywę dla tradycyjnych rozpuszczalników chemicznych. Charakteryzują się one wysoką efektywnością w rozpuszczaniu różnych związków bioaktywnych, co czyni je bezpieczniejszymi dla środowiska alternatywami dla tradycyjnych rozpuszczalników. Niestety przygotowanie niektórych NADES może być skomplikowane, a ich stabilność może zależeć od warunków przechowywania (13, 22, 23). UNADE to nowoczesna technika, która łączy wykorzystanie NADES z ultradźwiękami. Użycie ultradźwięków zwiększa wydajność ekstrakcji poprzez skuteczniejsze rozbijanie ścian komórkowych, co pozwala na lepszą elucję związków bioaktywnych przy jednoczesnym zachowaniu stabilności substancji aktywnych (22).
Poza nowoczesnymi metodami ekstrakcji należy pamiętać, że nadal bardzo popularne są metody tradycyjne, takie jak: HEX, ETE, CMC, HD oraz SE. Metody te, mimo swoich ograniczeń, wciąż znajdują szerokie zastosowanie ze względu na prostotę, niski koszt oraz wieloletnie doświadczenie w ich stosowaniu.
CMC jest jedną z najstarszych metod ekstrakcji. Polega na moczeniu surowca roślinnego w rozpuszczalniku w temperaturze pokojowej. Często stosuje się tu dodatkowo mieszanie mechaniczne, które pomaga w wydobywaniu związków aktywnych, zwłaszcza przy długim czasie kontaktu z rozpuszczalnikiem (23). SE polega na wielokrotnej ekstrakcji próbki w wysokiej temperaturze przy użyciu świeżego rozpuszczalnika, co zapewnia maksymalny odzysk związków. Wadą SE jest długi czas procesu i ryzyko degradacji termicznej niektórych związków (24, 25).
Wydajność ekstrakcji zależy także od innych parametrów, w tym stopnia rozdrobnienia surowca oraz temperatury procesu. Odpowiednie rozdrobnienie surowca (od 0,25 mm do 0,425 mm) daje możliwość zwiększenia powierzchni kontaktu z rozpuszczalnikiem, przyspieszając elucję związków (16, 17).
W tabeli 1 zestawiono przegląd najczęściej stosowanych metod wraz z warunkami ekstrakcji szałwii.
Tab. 1. Metody ekstrakcji ziela szałwii oraz ich warunki
Metoda ekstrakcjiWarunki ekstrakcjiRozpuszczalnikTemperatura (°C)Czas ekstrakcji (min)Piśmiennictwo
SFECiśnienie: 350 barNadkrytyczny CO250b/d(5)
SFECiśnienie: 10-30 MPaCO240-6060-180(26)
MACMaceracja 5 g próbki korzeni96% EtOH201440(5)
MAEMikrofale: 600 W96% EtOHb/d30(5)
MAEMikrofale: 600 W50% EtOH50-9030-420(26, 27)
MAEMikrofale: 300 WEtOH, MeOH60-8010-20(28)
SEEkstrakcja 20 g surowca96% EtOHb/d360(5)
SEEkstrakcja 50 g surowca60% EtOH50-90180-420(27, 29)
UEAUltradźwięki: 30 kHz, moc 50 W96% EtOH3060(5)
NADESEkstrakcja z chlorku choliny: kwas mlekowy (1:2)Naturalny głęboko eutektyczny rozpuszczalnik40-5060(10, 12, 15)
UNADEUltradźwięki: 700 WNaturalny głęboko eutektyczny rozpuszczalnik6045(30)
HEXEkstrakcja ciecz-cieczHeksan20180-420(27, 31)
ETEEkstrakcja ciecz-cieczEtOH25180-420(8)
UAEUltradźwięki: 40 kHz, moc 300 WMeOH50-90180-600(8, 9)
UAEUltradźwięki: implozja pęcherzyków kawitacyjnych50% EtOH4022(17)
UAEUltradźwięki: 40 kHz, moc 300 WEtOH, H2O25-5030-60(26)
HDDestylacja w aparacie typu ClevengeraH2OZależna od destylacjiZależna od destylacji(26, 32)
CMCOrbitalny shaker50% MeOH25b/d(10)
EAEZastosowanie enzymów rozkładających błony komórkoweH2O ZmiennaZależny od typu enzymu(33)
EAEMieszanina enzymów celulazy i proteazy (1:1 w/w)H2O54,3120(22)
PEFPole elektryczne: pulsacja 100 μs25% EtOH2230(34)
MMEMikrofale: 260 WGenapol X-080227(23)
b/d – brak danych; CMC (ang. conventional maceration) – maceracja konwencjonalna; EAE (ang. enzyme-assisted extraction) – ekstrakcja enzymatyczna; ETE (ang. ethanol extraction) – ekstrakcja etanolem; HD (ang. hydrodistillation) – hydrodestylacja; HEX (ang. hexane extraction) – ekstrakcja heksanem; MAC – maceracja; MAE (ang. microwave-assisted extraction) – ekstrakcja wspomagana mikrofalami; MME (ang. microwave-assisted micellar extraction) – ekstrakcja micelarna wspomagana mikrofalami; NADES (ang. natural deep eutectic solvent extraction) – ekstrakcja w rozpuszczalnikach eutektycznych; PEF (ang. pulsed electric field extraction) – ekstrakcja wspomagana polem elektrycznym; SE (ang. soxhlet extraction) – ekstrakcja Soxhleta; SFE (ang. supercritical fluid extraction) – ekstrakcja płynem w stanie nadkrytycznym; UAE (ang. ultrasound-assisted extraction) – ekstrakcja wspomagana ultradźwiękami; UNADE (ang. ultrasound-assisted NADES extraction) – wariant ultradźwiękowy NADES
Warto wspomnieć również, że oprócz ekstraktów z szałwii wysoki potencjał kosmetyczny wykazuje olejek eteryczny pozyskany z tej rośliny. HD to klasyczna metoda izolacji olejków eterycznych, która w ostatnich latach została udoskonalona poprzez zastosowanie technologii mikrofalowej. Użycie mikrofal w tym procesie przyspiesza ekstrakcję, zwiększając jej wydajność i redukując ryzyko utraty składników termolabilnych (14, 15).
Postęp technologiczny w metodach ekstrakcji, takich jak ekstrakcja nadkrytycznym CO2, wspomagana ultradźwiękami, wspomagana mikrofalami, hydrodestylacja czy ekstrakcja w rozpuszczalnikach eutektycznych i ekstrakcja w rozpuszczalnikach eutektycznych wspomagana ultradźwiękami, a także ekstrakcja wspomagana polem elektrycznym oraz micelarna wspomagana mikrofalami pozwalają na znaczne zwiększenie efektywności pozyskiwania cennych substancji aktywnych z tych roślin. Nowoczesne techniki pozwalają na wydobycie kluczowych związków, takich jak: kwas rozmarynowy, kwas ursolowy, kwas oleanowy czy inne terpeny, bez ryzyka ich degradacji i przy jednoczesnym zmniejszeniu użycia toksycznych rozpuszczalników. Z kolei ekstrakcje wspomagane ultradźwiękami z użyciem etanolu pozwalają na skuteczne pozyskiwanie polifenoli, co przekłada się na większą aktywność przeciwutleniającą i przeciwzapalną ekstraktów. Technologie enzymatyczne i micelarne, wykorzystujące bezpieczne i nietoksyczne rozpuszczalniki, eliminują potrzebę użycia szkodliwych substancji, takich jak heksan czy chloroform, co przyczynia się do bardziej ekologicznych procesów produkcyjnych.
Składniki aktywne występujące w ekstrakcie z szałwii

Powyżej zamieściliśmy fragment artykułu, do którego możesz uzyskać pełny dostęp.
Mam kod dostępu
  • Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu albo wszystkich artykułów (w zależności od wybranej opcji), należy wprowadzić kod.
  • Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.
  • Aby kupić kod proszę skorzystać z jednej z poniższych opcji.

Opcja #1

24

Wybieram
  • dostęp do tego artykułu
  • dostęp na 7 dni

uzyskany kod musi być wprowadzony na stronie artykułu, do którego został wykupiony

Opcja #2

59

Wybieram
  • dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
  • dostęp na 30 dni
  • najpopularniejsza opcja

Opcja #3

119

Wybieram
  • dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
  • dostęp na 90 dni
  • oszczędzasz 58 zł
Piśmiennictwo
1. Abdelkader M, Ahcen B, Rachid D i wsp. Materiel AP. Phytochemical study and biological activity of Sage. Int J Biol Biomol Agric Food Biotechnol Eng 2014; 8(11):1227-31.
2. Zhumaliyeva G, Zhussupova A, Zhusupova GE i wsp. Natural compounds of Salvia L. genus and molecular mechanism of their biological activity. Biomedicines 2023; 11(12):3151-75.
3. Hamidpour R, Hamidpour S, Hamidpour M i wsp. Sage: The functional novel natural medicine for preventing and curing chronic illnesses. Int J Case Rep Images Cover 2013; 4(12):671-7.
4. Jassbi AR, Zare S, Firuzi O i wsp. Bioactive phytochemicals from shoots and roots of Salvia species. Phytochem Rev 2016; 15(5):829-67.
5. Zengin G, Mahomoodally F, Picot-Allain C i wsp. Metabolomic profile of Salvia viridis L. root extracts using HPLC–MS/MS technique and their pharmacological properties: A comparative study. Ind Crops Prod 2019; 131:266-80.
6. Topçu G, Yücer R, Şenol H. Bioactive constituents of anatolian Salvia Species. In: Georgiev V, Pavlov A (eds.): Salvia Biotechnology. Cham: Springer International Publishing 2017:131-2.
7. Poulios E, Giaginis C, Vasios GK. Current state of the art on the antioxidant activity of Sage (Salvia spp) and its bioactive components. Planta Med 2020; 86(4):224-38.
8. Miguel G, Cruz C, Faleiro ML i wsp. Salvia officinalis L. essential oils: Effect of hydrodistillation time on the chemical composition, antioxidant and antimicrobial activities. Nat Prod Res 2011; 25(5):526-41.
9. Ghorbani A, Esmaeilizadeh M. Pharmacological properties of Salvia officinalis and its components. J Tradit Complement Med 2017; 7(4):433-40.
10. He X, Yang J, Huang Y i wsp. Green and Efficient Ultrasonic-Assisted Extraction of Bioactive Components from Salvia miltiorrhiza by Natural Deep Eutectic Solvents. Molecules, 2020; 25(1):140.
11. Vanda H, Dai Y, Wilson EG i wsp. Green solvents from ionic liquids and deep eutectic solvents to natural deep eutectic solvents. Comptes Rendus Chim 2018; 21(6):628-38.
12. Jakovljević M, Jokić S, Molnar M i wsp. Application of deep eutectic solvents for the extraction of carnosic acid and carnosol from sage (Salvia officinalis L.) with response surface methodology optimization. Plants 2021; 10(1):1-20.
13. Karakaya S, El SN, Karagozlu N i wsp. Microwave-assisted hydrodistillation of essential oil from rosemary. J Food Sci Technol 2014; 51(6):1056-65.
14. Pingret D, Fabiano-Tixier AS, Chemat F. An Improved Ultrasound Clevenger for Extraction of Essential Oils. Food Anal Methods 2014; 7(1):9-12.
15. Kyriakoudi A, Radojčić Redovniković I, Vidović S i wsp. Coupling deep eutectic solvents with innovative extraction techniques towards plant derived bioactive compositions. RSC Sustain 2024; 2(6):1675-91.
16. Chávez-González ML, Sepúlveda L, Verma DK i wsp. Conventional and emerging extraction processes of flavonoids. Processes 2020; 8(4):1-15.
17. Shi L, Zhao W, Yang Z i wsp. Extraction and characterization of phenolic compounds and their potential antioxidant activities. Environ Sci Pollut Res 2022; 29(54):81112-29.
18. Peng LQ, Cao J, Du LJ i wsp. Rapid ultrasonic and microwave-assisted micellar extraction of zingiberone, shogaol and gingerols from gingers using biosurfactants. J Chromatogr A 2017; 1515:37-44.
19. Wolski T, Najda A, Wolska-Gawron K. Czarnuszka damasceńska (Nigella damascena L.) – zawartość i skład lipidów oraz olejku występującego w nasionach. Postępy Fitoter 2017; 18(4):259-66.
20. Makuch E, Wróblewska A. Wpływ czasu prowadzenia ekstrakcji nierozwiniętych pąków kwiatowych drzewa goździkowca wonnego na zawartość substancji biologicznie aktywnych w ekstraktach etanolowych. Postępy w technologii i inżynierii chem 2017; 14-22.
21. Porres-Martínez M, González-Burgos E, Carretero ME i wsp. Salvia spp.: An updated on antioxidant activity and pharmacological uses. [In:] Georgiev V, Pavlov A (eds.): Salvia Biotechnology. Cham: Spring Intern Publ 2017; 151-77.
22. Su CH, Pham TTT, Cheng HH. Aqueous enzymatic extraction of rosmarinic acid from Salvia officinalis: optimisation using response surface methodology. Phytochem Anal 2020; 31(5):575-82.
23. Shi Z, Wang Y, Zhang H. Combination of microwave assisted micellar extraction and liquid chromatography for determination of cryptotanshinone, tanshinone I, and tanshinone IIA in Salvia miltiorrhiza Bunge. J Liq Chromatogr Relat Technol 2009; 32(5):698-711.
24. González-Hernández RA, Valdez-Cruz NA, Trujillo-Roldán MA. Factors that influence the extraction methods of terpenes from natural sources. Chem Pap 2024; 78(5):2783-810.
25. López-Salazar H, Camacho-Díaz BH, Ocampo MLA i wsp. Microwave-assisted extraction of functional compounds from plants: A Review. BioResources 2023; 18(3):6614-38.
26. Jakovljević M, Jokić S, Molnar M i wsp. Bioactive profile of various Salvia officinalis L. Preparations. Plants 2019; 8(3):1-11.
27. Raal A, Orav A, Arak E. Composition of the essential oil of Salvia officinalis L. from various European countries. Nat Prod Res 2007; 21(5):406-11.
28. Patel K, Panchal N, Ingle P. Review of extraction techniques extraction methods: Microwave, Ultrasonic, Pressurized Fluid, Soxhlet Extraction, Etc. Int J Adv Res Chem Sci 2019; 6(3):6-21.
29. Glisic S, Ivanovic J, Ristic M i wsp. Extraction of sage (Salvia officinalis L.) by supercritical CO2: Kinetic data, chemical composition and selectivity of diterpenes. J Supercrit Fluids 2010; 52(1):62-70.
30. Bajkacz S, Adamek J. Development of a method based on natural deep eutectic solvents for extraction of flavonoids from food samples. Food Anal Methods 2018; 11(5):1330-44.
31. Aleksovski SA, Sovová H. Supercritical CO2 extraction of Salvia officinalis L. J Supercrit Fluids 2007; 40(2):239-45.
32. European Medicines Agency. Assessment report on Salvia Officinalis L., folium and Salvia Officinales L., aetheroleum. 2016; 44:17-8.
33. Shi M, Huang F, Deng C i wsp. Bioactivities, biosynthesis and biotechnological production of phenolic acids in Salvia miltiorrhiza. Crit Rev Food Sci Nutr 2019; 59(6):953-64.
34. Athanasiadis V, Lakka A, Palaiogiannis D i wsp. Pulsed electric field and salvia officinalis l. Leaves: A successful combination for the extraction of high value added compounds. Foods 2021; 10(9):1-15.
35. Veličković DT, Karabegović IT, Stojičević SS i wsp. Comparison of antioxidant and antimicrobial activities of extracts obtained from Salvia glutinosa L. and Salvia officinalis L. Hem Ind 2011; 65(5):599-605.
36. Sabry MM, Abdel-Rahman RF, El-Shenawy SM i wsp. Estrogenic activity of Sage (Salvia officinalis L.) aerial parts and its isolated ferulic acid in immature ovariectomized female rats. J Ethnopharmacol 2022; 282:1-10.
37. Politeo O, Jukić M, Miloš M. Chemical composition and antioxidant activity of essential oils of twelve spice plants. Croat Chem Acta 2006; 79(4):545-52.
38. Radulescu V, Chiliment S, Oprea E. Capillary gas chromatography-mass spectrometry of volatile and semi-volatile compounds of Salvia officinalis. J Chromatogr A 2004; 1027(1-2):121-6.
39. Roby MHH, Sarhan MA, Selim KAH i wsp. Evaluation of antioxidant activity, total phenols and phenolic compounds in thyme (Thymus vulgaris L.), sage (Salvia officinalis L.), and marjoram (Origanum majorana L.) extracts. Ind Crops Prod 2013; 43(1):827-31.
40. Cuvelier ME, Berset C, Richard H. Antioxidant constituents in Sage (Salvia officinalis). J Agric Food Chem. 1994;42(3):665-9.
41. Tundis R, Leporini M, Bonesi M i wsp. Salvia officinalis L. from Italy: A comparative chemical and biological study of its Essential Oil in the mediterranean context. Molecules 2020; 25(24):1-16.
42. Yayli N, Cansu TB, Yilmaz N i wsp. Constituents of the essential oil from the flower, leaf and stem of Salvia viridis L. grown in Turkey. Asian J Chem 2010; 22(5):3439-46.
43. Demirpolat A. Essential Oil composition analysis, antimicrobial activities, and biosystematic studies on six species of Salvia. Life 2023; 13(3):634-44.
44. Belgin ÇŞ. The effect of cuttings stages on components and content of Essential Oils from Salvia viridis L. Kahramanmaraş Sütçü ?mam Üniversitesi Tarım ve Doğa Derg 2019; 22(1):71-7.
45. Grzegorczyk-Karolak I, Kiss AK. Determination of the phenolic profile and antioxidant properties of Salvia viridis L. shoots: A comparison of aqueous and hydroethanolic extracts. Molecules 2018; 23(6):1-16.
46. Grzegorczyk-Karolak I, Staniewska P, Lebelt L i wsp. Optimization of cultivation conditions of Salvia viridis L. shoots in the Plantform bioreactor to increase polyphenol production. Plant Cell Tissue Organ Cult 2022; 149(1-2):269-80.
47. Rungsimakan S, Rowan MG. Terpenoids, flavonoids and caffeic acid derivatives from Salvia viridis L. cvar. Blue Jeans. Phytochemistry 2014; 108:177-88.
48. Al-Jaber HI, Al-Kubaisi SK. HPLC profiling of selected phenolic acids and flavonoids in Salvia eigii, Salvia hierosolymitana and Salvia viridis growing wild in Jordan and their in vitro antioxidant activity. PeerJ 2020; 8.
49. Grzegorczyk I, Wilmańska H. Mikrorozmnażanie Salvia officinalis L. Biotechnologia 2004; 2(65):212-8.
50. Horiuchi K, Shiota S, Hatano T i wsp. Antimicrobial activity of oleanolic acid from Salvia officinalis and related compounds on vancomycin-resistant enterococci (VRE). Biol Pharm Bull 2007; 30(6):1147-9.
51. Ghezelbash GH, Razavi A, Mahyari F. Antimicrobial activity of Salvia officinalis acetone extract against pathogenic isolates. J Herb Drug 2015; 5(4):215-8.
52. Longaray Delamare AP, Moschen-Pistorello IT, Artico L i wsp. Antibacterial activity of the essential oils of Salvia officinalis L. and Salvia triloba L. cultivated in South Brazil. Food Chem 2007; 100(2):603-8.
53. Rungsimakan S, Rowan MG. Phytochemical and biological activity studies on Salvia viridis L. PhD Thesis, Univ Bath 2011.
54. Spaggiari C, Annunziato G, Costantino G. Ursolic and oleanolic acids: two natural triterpenoids targeting antibacterial multidrug tolerance and biofilm formation. Front Nat Prod 2024; 3:1-6.
55. Geremew A, Gonzalles J, Peace E i wsp. Green synthesis of novel silver nanoparticles using Salvia blepharophylla and Salvia greggii: Antioxidant and antidiabetic potential and effect on foodborne bacterial pathogens. Int J Mol Sci 2024; 25(2):1-22.
56. Fazly Bazzaz BS, Khameneh B, Rassouli R i wsp. In vitro evaluation of antibacterial activity of verbascoside, lemon verbena extract and caffeine in combination with gentamicin against drug-resistant Staphylococcus aureus and Escherichia coli clinical isolates. AJP 2018; 8(3):246-53.
57. Nour NN, Aboul-Enein AM. Salvia officinalis L. (sage) ameliorates radiation-induced oxidative brain damage in rats. Arab J Nucl Sci Appl 2013; 46(1):1-10.
58. Iacopetta D, Ceramella J, Scumaci D i wsp. An update on recent studies focusing on the antioxidant properties of Salvia Species. Antioxidants 2023; 12(12):1-21.
59. Uysal I, Koçer O, Mohammed FS i wsp. Pharmacological and nutritional properties: Genus Salvia. Adv Pharmacol Pharm 2023; 11(2):140-55.
60. Yadav S, Mukundan U. In Vitro antioxidant properties of Salvia coccinea Buc’hoz ex Etl. and Salvia officinalis L. Indian J Fundam Appl Life Sci 2011; 1(3):232-8.
61. Vieira SF, Ferreira H, Neves NM. Antioxidant and anti-inflammatory activities of cytocompatible Salvia officinalis extracts: A comparison between traditional and Soxhlet extraction. Antioxidants 2020; 9(11):1-25.
62. Occhipinti A, Capuzzo A, Arceusz A i wsp. Comparative analysis of α- and β-thujone in the essential oil and supercritical CO2 extract of sage (Salvia officinalis L.). J Essent Oil Res 2014; 26(2):85-90.
63. Oliveira KB, Palú É, Weffort-Santos AM i wsp. Influence of rosmarinic acid and Salvia officinalis extracts on melanogenesis of B16f10 cells. Rev Bras Farmacogn 2013; 23(2):249-58.
64. Grzegorczyk-Karolak I, Krzemińska M, Grąbkowska R i wsp. Accumulation of polyphenols and associated gene expression in hairy roots of Salvia viridis exposed to methyl jasmonate. Int J Mol Sci 2024; 25:764.
65. Karamaya KC, B. The antioxidant capacities of leaf extracts from Salvia viridis L. Curr Perspect Med Aromat Plants 2022; 5:127-35.
otrzymano: 2024-04-03
zaakceptowano do druku: 2024-04-24

Adres do korespondencji:
*mgr inż. Anna Dziki
Katedra Chemii i Technologii Organicznej Wydział Inżynierii i Technologii Chemicznej Szkoła Doktorska PK Politechnika Krakowska im. Tadeusza Kościuszki
ul. Warszawska 24, 31-155 Kraków
e-mail: anna.dziki@doktorant.pk.edu.pl

Postępy Fitoterapii 2/2024
Strona internetowa czasopisma Postępy Fitoterapii