Jestem lekarzem, farmaceutą lub osobą prowadzącą obrót produktami leczniczymi

Ponad 7000 publikacji medycznych!

Artykuły w Czytelni Medycznej o SARS-CoV-2/Covid-19

Poniżej zamieściliśmy fragment artykułu. Informacja nt. dostępu do pełnej treści artykułu
© Borgis - Postępy Fitoterapii 3/2023, s. 80-88 | DOI: 10.25121/PF.2024.25.3.80
*Marcin Szymański1, Justyna Staniszewska2
Inonotus obliquus – chemizm i działanie farmakologiczne
Inonotus obliquus – chemistry and pharmacological effects
1Centrum Zaawansowanych Technologii, Uniwersytet im. Adama Mickiewicza w Poznaniu
Dyrektor Centrum: prof. dr hab. n. chem. Artur Stefankiewicz
2Katedra i Zakład Farmakognozji i Biomateriałów, Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego w Poznaniu
Kierownik Zakładu: prof. dr hab. n. farm. Judyta Cielecka-Piontek
Streszczenie
Błyskoporek podkorowy (łac. Inonotus obliquus) jest nadrzewnym gatunkiem grzyba, inaczej nazywanym czagą (chaga). Występuje na terenach półkuli północnej, w lasach i parkach Ameryki Północnej, Azji oraz Europy. W Polsce można go spotkać najczęściej na brzozach, rzadziej występuje na: topolach, bukach, klonach, dębach czy innych drzewach liściastych. W Polsce od 2014 roku jest gatunkiem częściowo chronionym.
Błyskoporek podkorowy stanowi cenne źródło związków czynnych, zawiera polisacharydy (m.in. β-glukany), fitosterole (głównie lanosterole, inotodiol oraz ergosterol), kwasy fenolowe, flawonoidy, garbniki, triterpeny (betulina, kwas betulinowy), aminokwasy, melaninę, witaminy oraz związki mineralne (wapń, potas, miedź, cynk, żelazo). Związki obecne w owocnikach błyskoporka przyczyniają się do działania immunomodulującego, przeciwnowotworowego, hipoglikemizującego, hepatoprotekcyjnego, przeciwwirusowego, przeciwbakteryjnego i antyoksydacyjnego.
Summary
The subcortical spinneret (Latin: Inonotus obliquus) is an arboreal species of fungus otherwise known as chaga (chaga). It is found in areas of the northern hemisphere, in forests, and in parks in North America, Asia, and Europe. In Poland, it can be found most often on birches and less frequently on poplars, beeches, maples, oaks, and other deciduous trees. It has been a partially protected species in Poland since 2014.
The subcortical glossophore is a valuable source of active compounds, containing polysaccharides (e.g. β-glucans), phytosterols (mainly lanosterols, inotodiol, and ergosterol), phenolic acids, flavonoids, tannins, triterpenes (betulin, betulinic acid), amino acids, melanin, vitamins and mineral compounds (calcium, potassium, copper, zinc, iron). The compounds present in the fruiting bodies of the spinneret contribute to immunomodulatory, anticancer, hypoglycaemic, hepatoprotective, antiviral, antimicrobial, and antioxidant activities.



Wstęp
Inonotus obliquus (Ach. ex Pers) Pilát – błyskoporek podkorowy należy do rodziny Hymenochaetaceae (Szczeciniakowate), rodzaju Hymenochaetales (Szczeciniakowce), podklasy Incertae sedis (o niepewnej pozycji), klasy Agaricomycetes (Pieczarniaki), podgromady Agaricomycotina, gromady Basidiomycota (Podstawczaki), królestwa Fungi (Grzyb) (1). Występuje pod polskimi nazwami: huba ukośna, huba skośnorurkowa, czaga, czyr brzozowy, włóknouszek ukośny, błyskoporek ukośny, huba brzozowa, czarna huba, czerniak brzozy, czyreń, czernidło, czarcie oko czy czanga (2, 3).
W Polsce gatunek ten jest objęty ochroną częściową na podstawie Rozporządzenia Ministra Środowiska z dnia 9 października 2014 roku w sprawie ochrony gatunkowej grzybów (Dz.U. 2014 poz. 1408).
Inonotus obliquus występuje najczęściej na różnych odmianach brzóz, należy do grzybów pasożytujących. Atakuje osłabioną lub zranioną część drzewa (2).
W medycynie ludowej był stosowany w leczeniu różnych chorób przewodu pokarmowego. Wyciągi z chaga stosowane były w Chinach, Korei, Rosji i krajach bałtyckich jako lek przeciwbakteryjny, hepatoprotekcyjny, przeciwzapalny, przeciwnowotworowy i przeciwutleniający (4, 5). W badaniach in vitro stwierdzono, że wyciągi są nietoksyczne i działają głównie przeciwwirusowo (6), przeciwutleniająco (7) i przeciwzapalnie (8).
Wieloletnie badania ekstraktów z owocników I. obliquus wykazywały ponadto działania: przeciwwirusowe, przeciwpasożytnicze, hipoglikemiczne, immunostymulujące, przeciwzapalne i przeciwnowotworowe (3).
Substancje aktywne pozyskuje się z różnych części grzyba, najczęściej wykorzystuje się owocniki, ale także i sklerotę (czyli grubą, twardą część grzyba, która tworzy struktury przechowujące substancje odżywcze w trudnych warunkach) i mycelium (sieć strzępek grzybów, z których można izolować endopolisacharydy, rośnie pod ziemią lub w materiale organicznym, jest to wegetatywna część grzyba odpowiedzialna za pobieranie składników odżywczych i rozprzestrzenianie się).
Związki biologicznie czynne występujące w owocnikach I. obliquus
Związki fenolowe
W różnych ekstraktach z błyskoporka podkorowego wykazano obecność takich związków fenolowych, jak: syringol, rezorcynol, gwajakol oraz kwasy fenolowe (szczawiowy, galusowy, protokatechowy, p-hydroksybenzoesowy, syryngowy, kawowy) (5, 9), analogi hispidyny: inonobliny A, B, C, ester metylowy kwasu inonotowego, dawallialaktony, felligridyny: D, E, G. Do ich syntezy dochodzi podczas działania stresu oksydacyjnego (10, 11).
Oznaczono zawartość sumy polifenoli w wyciągu wodnym na poziomie 1,85 ± 0,11% w przeliczeniu na kwas kawowy, a w wyciągu metanolowym 1,01 ± 0,03%, ponadto wyciąg metanolowy charakteryzował się najwyższą zawartością sumy kwasów fenolowych (0,127 ± 0,008% w przeliczeniu na kwas kawowy). W wyciągu metanolowym oznaczono ponadto sumę flawonoidów 0,193 ± 0,019% w przeliczeniu na hiperozyd oraz sumę flawonoli 0,351 ± 0,012% w przeliczeniu na rutozyd (12).
Związki triterpenowe
Triterpeny obecne w I. obliquus to: 3β-hydroksylanosta-8,24-dien-21al, 3β,22,25-trihydroksyl-lanosta-8-en, lanosta-24-en-3β,21-diol, lanosta-79(11)-23E-trien-3β,22R,25-triol, lanosta-8,23E-dien-3β,22R,25-triol, 3β,22-dihydroksy-lanosta-7,9(11),24-trien (13), inonotusany A-C, kwas 3β-hydroksy-25,26,27-trinorlanosta-8,22E-dien-24-owy, kwas 3β-hydroksylanosta-7,9(11),24-trien-21-owy, kwas betulinowy, kwas oleanolowy, kwas trametenolowy, inonotsutriole A, B, D, E, inonotlenek A i B, lanosterol, betulina, 3β-hydroksylanosta-8,24-dien-21-al, fuscoporianol C, 3β,22-dihydroksylanosta-7,9(11),24-trien i 3β,22α-dihydroksylanosta-8,25-dien-24-on (14). (22R)-Lanosta-8,24-diene-3β,22-diol (Inotodiol) został wyizolowany przez Ludwiczak i Wrzeciono w 1962 roku. Związki takie, jak inotodiol, podstawione przy węglu C-22 lanosterolu zwiększają działanie przeciwnowotworowe, natomiast kwas trametenolowy podstawiony przy węglu C-21 lanosterolu obniża tę aktywność (14, 15).
Ergosterol i nadtlenek ergosterolu
Ergosterol jest biologicznym prekursorem (prowitaminą) witaminy D2. Jest składnikiem ściany komórkowej grzybów. Pełni tę samą funkcję, co cholesterol w komórkach zwierzęcych. Obecność ergosterolu w komórkach ściany komórkowej grzybów i jego brak w komórkach zwierzęcych może okazać się punktem odniesienia podczas projektowania nowych leków przeciwgrzybiczych (16).
Alkohol benzylowy
Wodny wyciąg z owocników błyskoporka poddano hydrolizie rozcieńczonym kwasem solnym, a następnie ekstrahowano octanem etylu, po czym poddano analizie GC-MS. Stwierdzono obecność węglowodorów, alkoholi, fenoli i różnych związków karbonylowych. W związku z obecnością benzaldehydu stwierdzono obecność alkoholu benzylowego, który jest metabolitem.
Polisacharydy
Mizuno i wsp. dowodzą, że rozpuszczalne w wodzie polisacharydy ze skleroty to ksylogalaktoglukany składające się z: glukozy, galaktozy, ksylozy, mannozy, arabinozy i fukozy. Wysokocząsteczkowe β-glukany są cząsteczkami bardziej aktywnymi niż ich niskomolekularne odpowiedniki. Poziom ich aktywności jest ściśle skorelowany z ich masą cząsteczkową, wiązaniami występującymi w cząsteczce i rozpuszczalnością w wodzie. Wyższa aktywność przeciwnowotworowa jest skorelowana z wyższą masą molekularną, mniejszą ilością wiązań między molekułami i lepszą rozpuszczalnością w wodzie (17, 18).
Kompleks fenolowych pigmentów (melaniny)
Inonotus obliquus syntetyzuje wysokocząsteczkowe pigmenty fenolowe, które zgodnie z ich właściwościami fizykochemicznymi przypisane zostały do melanin. Podczas badań wykazano, że jony miedzi (0,008%), pirokatechol (1,0 mM) i tyrozyna (20,0 mM) stymulowały melanogenezę. Produkcja melaniny skorelowana była z syntezą o- i p-difenolooksydaz. Melanina grzybowa miała silne działanie przeciwutleniające i genoprotekcyjne (19, 20).
Wyciąg chloroformowy – analiza GC-MS
Analiza GC-MS pozwoliła zidentyfikować m.in.: izowanilinę (związek o silnym aromacie), santalen (seskwiterpen wykazujący działanie antyseptyczne (21)), α-selinen (związek o udowodnionym działaniu przeciwbakteryjnym i przeciwgrzybiczym (22)), aldehyd syryngowy (wykazujący właściwości przeciwzapalne (23)), kwas linolowy (działanie przeciwmiażdżycowe, przeciwnowotworowe (24)), tymol (działanie antyoksydacyjne, przeciwbakteryjne (25)), α-bergamoten (działanie uspokajające) i lanosterol (działanie przeciwnowotworowe (26)) (12).
Hodowla I. obliquus w reaktorze
Komórki grzyba próbowano hodować w reaktorze; skutkowało to zwiększeniem poziomu aglikonów flawonoidów i melanin (analogów hispidyny), które były w mniejszości. Efekt immunostymulujący, który udało się osiągnąć poprzez stosowanie komórek grzyba wyhodowanego sztucznie, wynosił zaledwie 50% w porównaniu z komórkami wyrosłymi naturalnie (27).
Działanie farmakologiczne I. obliquus
Znaczenie w terapii przeciwnowotworowej
Szacuje się, że do końca 2030 roku zostanie zarejestrowanych ponad 21 mln nowych zachorowań na raka. Jak podaje WHO, aż 13 mln osób najprawdopodobniej umrze z tego powodu. Stosowanie chemio- czy radioterapii wiąże się z występowaniem licznych działań niepożądanych. Odkryto, że skuteczne w leczeniu choroby nowotworowej może być stosowanie leczniczych grzybów. Wykazują one działanie wspomagające, a jednocześnie nie udowodniono ich działania toksycznego. Są środkami oficjalnie używanymi w Japonii jako medyczne środki lecznicze w terapii przeciwnowotworowej. Główną przyczyną wystąpienia choroby nowotworowej jest nieprawidłowe funkcjonowanie układu odpornościowego. Polisacharydy będące głównymi składnikami grzybów leczniczych odpowiadają za pobudzenie układu odpornościowego do walki z nowotworem. Udowodniono także, że stosowanie ekstraktów etanolowych okazało się bardziej skuteczne w działaniu przeciwnowotworowym niż stosowanie ekstraktów wodnych (28, 29).
Różni autorzy próbowali określić molekularny mechanizm działania ekstraktów z I. obliquus. Obecnie pojawiają się dwa mechanizmy działania ekstraktów z I. obliquus. Pierwszy jest związany z szerokim wpływem na enzymy antyoksydacyjne i poziom reaktywnych form tlenu (ROS). Drugi jest związany z efektami peroksy – receptora aktywowanego przez proliferator gamma (PPARγ). Ten receptor może być kluczowym czynnikiem w przeciwzapalnym, przeciwutleniającym i przeciwnowotworowym działaniu ekstraktów z I. obliquus. Można wnioskować, że I. obliquus pasuje do definicji żywności funkcjonalnej i ma potencjalnie pozytywny wpływ na zdrowie, wykraczający poza podstawowe odżywianie, jednak potrzebne są badania spełniające kryteria medycyny opartej na dowodach (EBM) (3).
Mechanizmy aktywności przeciwnowotworowej wyciągów z owocników I. obliquus przebiegające na różnych poziomach
Wpływ na aktywność enzymów
Związki czynne obecne w I. obliquus wpływają na ekspresję informacji genetycznej w postaci syntetyzowanych białek. Enzymy będące białkami są strukturami regulującymi funkcjonowanie komórki (30).
Redukcja indeksu mitotycznego
Jednym z czynników charakteryzujących komórki nowotworowe są nieograniczone podziały mitotyczne. Wymknęły się one spod kontroli białek regulujących i sygnałów międzykomórkowych. Stosowanie wyciągów skutkuje u zwierząt doświadczalnych, u których indukowano nowotwór, zmniejszeniem masy guza (31).
Ochrona jądrowego DNA ludzkich limfocytów przed stresem oksydacyjnym
Reaktywne formy tlenu odgrywają znaczącą rolę w procesach degeneracyjnych i patologicznych, takich jak: starzenie, nowotwory, choroby mięśnia sercowego, choroba Alzheimera, procesy neurodegeneracyjne, zaćma czy miażdżyca. Nadmierna produkcja reaktywnych form tlenu może prowadzić do uszkodzenia białek, struktur DNA, ogólnej niestabilności genomu, których akumulacja jest czynnikiem prosperującym do wystąpienia mutacji, a w dalszych skutkach rozpoczęciem procesu karcynogenezy. Stosowanie ekstraktu z I. obliquus wykazało efekt protekcyjny przeciwko oksydacyjnym zniszczeniom DNA w ludzkich limfocytach (32).
Ochrona przed nieprawidłową komunikacją międzykomórkową
Park dowiódł, że przyjmowanie ekstraktów z chaga może wykazywać działanie przeciwnowotworowe i ochronne przed nieprawidłową komunikacją międzykomórkową przez interakcję z czynnikami ERK1/2, p38 i kinazami MAP (33).
Indukcja programowanej śmierci komórki
Suplementacja ekstraktem z I. obliquus skutkowała znaczącym wzrostem w uwalnianiu czynnika martwicy nowotworu α (TNF-α) przez makrofagi. Czynnik martwicy nowotworu jest uwalniany także przez komórki NK i limfocyty T. Adekwatna doza TNF-α może indukować mediowaną przez receptory programowaną śmierć komórki (34).
Wpływ na aktywność enzymów
Stosowanie ekstraktu z I. obliquus może mieć wpływ na metabolizm komórek nowotworowych poprzez obniżenie aktywności dehydrogenazy mleczanowej, dehydrogenazy hydroksybutylowej, dehydrogenazy jabłczanowej, transpeptydazy γ-glutamylowej. Podwyższa natomiast aktywność katalazy (34).
Oddziaływanie ekstraktu z I. obliquus na makrofagi
Jednymi ze struktur przebadanymi pod kątem aktywności wobec ekstraktów z I. obliquus były makrofagi. Okazało się, że wykazują one aktywność cytotoksyczną przez udział w fagocytozie:
• bezpośrednią komórkową cytotoksyczność – oddziaływanie komórki z komórką,
• sekrecję cytotoksycznych cytokin: (IL-1, TNF-α) i tlenku azotu.
Aktywowane makrofagi zdają się być ważnymi czynnikami układu odpornościowego gospodarza, które biorą czynny udział w zwalczaniu wzrostu guza nowotworowego. Efektorem działalności makrofagów jest tlenek azotu. Uczestniczy nie tylko w zabijaniu komórek nowotworowych, ale również w obronie przed bakteriami, grzybami i parazytami. Polisacharydy są molekułami, które stymulują makrofagi do sekrecji tlenku azotu (35).
Aktywność przeciwnowotworowa związków, grup związków i wyciągów z chaga
Związki czynne pochodzące z chaga wykazują wielokierunkowe działanie przeciwnowotworowe i immunomodulujące. Mają znaczący wpływ na funkcjonowanie układu odpornościowego. Są tzw. modulantami odpowiedzi immunologicznej. Toksyczność związków czynnych jest znikoma, co może się okazać dobrą alternatywą dla obecnie stosowanej chemioterapii.
Grzyb jest stosowany w rosyjskiej medycynie ludowej w leczeniu nowotworów, takich jak: nieoperowalny rak piersi, nowotwory ust, nowotwory gastryczne, nowotwory przytarczyc, nowotwory płuc, nowotwory żołądka, nowotwory skóry, nowotwory odbytu, choroba Hodgkina (11).

Powyżej zamieściliśmy fragment artykułu, do którego możesz uzyskać pełny dostęp.
Mam kod dostępu
  • Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu albo wszystkich artykułów (w zależności od wybranej opcji), należy wprowadzić kod.
  • Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.
  • Aby kupić kod proszę skorzystać z jednej z poniższych opcji.

Opcja #1

24

Wybieram
  • dostęp do tego artykułu
  • dostęp na 7 dni

uzyskany kod musi być wprowadzony na stronie artykułu, do którego został wykupiony

Opcja #2

59

Wybieram
  • dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
  • dostęp na 30 dni
  • najpopularniejsza opcja

Opcja #3

119

Wybieram
  • dostęp do tego i pozostałych ponad 7000 artykułów
  • dostęp na 90 dni
  • oszczędzasz 58 zł
Piśmiennictwo
1. http://www.indexfungorum.org.
2. Łakomy P, Kwaśna H. Atlas hub. Multico, Warszawa 2008.
3. Szychowski KA, Skóra B, Pomianek T i wsp. Inonotus obliquus – from folk medicine to clinical use. J Tradit Compl Med 2021; 11(4):293-302.
4. Lemieszek MK, Langner E, Kaczor J i wsp. Anticancer effects of fraction isolated from fruiting bodies of Chaga medicinal mushroom, Inonotus obliquus (Pers.:Fr.) Pilát (Aphyllophoromycetideae): in vitro studies. Intern J Med Mushr 2011; 13(2):131-43.
5. Glamočlija J, Ćirić A, Nikolić M i wsp. Chemical characterization and biological activity of Chaga (Inonotus obliquus), a medicinal “mushroom”. J Ethnopharmacol 2015; 162:323-32.
6. Awadh A, Mothana NA, Lesnau RAA i wsp. Antiviral activity of Inonotus hispidus. Fitoter 2003; 74:483-5.
7. Nakajima Y, Sato Y, Konishi T. Antioxidant small phenolic ingredients in Inonotus obliquus (persoon) Pilat (Chaga). Chem Pharmaceut Bull 2007; 55(8):1222-6.
8. Kim HG, Yoon DH, Kim CH i wsp. Ethanol extract of Inonotus obliquus inhibits lipopolysaccharide-induced inflammation in RAW 264.7 macrophage cells. J Med Food 2007; 10:80-9.
9. Kuriyama I, Nakajima Y, Nishida H i wsp. Inhibitory effects of low molecular weight polyphenolics from Inonotus obliquus on human DNA topoisomerase activity and cancer cell proliferation. Mol Med Rep 2013; 8:535-42.
10. Lee IK, Kim YS, Jang YW i wsp. New antioxidant polyphenols from the medicinal mushroom Inonotus obliquus. Bioorg & Med Chem Lett 2007; 17:6678-81.
11. Staniszewska J, Szymański M, Ignatowicz E. Antitumor and immunomodulatory activity of Inonotus obliquus. Herba Polonica 2017; 63:2.
12. Szymański M, Staniszewska J. Badania jakościowe i ilościowe wyciągów z Inonotus obliquus. Post Fitoter 2022; 23(1):3-9.
13. Zheng W, Zhao Y, Zheng X i wsp. Production of antioxidant and metabolites by submerged cultures of Inonotus obliquus cocultured with Phellinus punctatus. Microbial Cell Physiol 2011; 89:157-67.
14. Zhao F, Mai Q, Ma J i wsp. Triterpenoids from Inonotus obliquus and their antitumor activities. Fitoter 2015; 101:34-40.
15. Wold CW, Gerwick WH, Wangensteen H i wsp. Bio-active triterpenoids and water-soluble melanin from Inonotus obliquus (Chaga) with immunomodulatory activity. J Funct Foods 2020; 71:104025.
16. Kang JH, Jang JE, Mishra SK i wsp. Ergosterol peroxide from Chaga mushroom (Inonotus obliquus) exhibits anticancer activity by down-regulation of the β-catenin pathway in colorectal cancer. J Ethnopharmacol 2015; 173:303-12.
17. Mizuno T, Zhuang C, Abe K i wsp. Antitumor and hypoglycemic activities of polysaccharides from the Sclerotia and Mycelia of Inonotus obliquus (Pers.: Fr.) Pil. (Aphyllophoromycetideae). Inter J Medicinal Mushr 1999; 1:301-16.
18. Smolibowska J, Szymański M, Szymański A. Medicinal properties of fungi occurring on Betula sp. trees. A review. Herba Polonica 2016; 62(3):63-76.
19. Babitskaia VG, Shcherba VV, Ikonnikova NV. Melaninovy? kompleks griba Inonotus obliquus (Melanin complex of the fungus Inonotus obliquus). Prikl Biokhim Mikrobiol 2000; 36(4):439-44.
20. Lee JH, Hyun CK. Insulin-sensitizing and beneficial lipid-metabolic effects of the water-soluble melanin complex extracted from Inonotus obliquus. Phytother Res 2014; 28(9):1320-8.
21. Tippman S, Scalcinati G, Siewers V i wsp. Production of farnesene and santalene by Saccharomyces cerevisiae using fed-betch cultivations with RQ- controlled feed. Biotechnol Bioengineering 2016; 113:72-81.
22. Akter K, Barnes EC, Loa Kum Cheung WL i wsp. Antimicrobial and antioxidant activity and chemical characterization of Erythrina stricta Roxb. (Fabaceae). J Ethnopharmacol 2016; 185:171-81.
23. Zhong J, Huang CG, Yu YJ i wsp. Chemical constituents from Perovskia atriplicifolia. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi 2015; 40,6:1108-13.
24. Ransden CE, Zamora D, Majrzchak-Hong S i wsp. Reevaluation of the traditional diet-heart hypothesis analysis of recovered data from Minnesota. Coronary Experiment (1968-73) 2016; 353:1246.
25. Coccimiglio J, Alipour M, Jiang HZ i wsp. Antioxidant, antimicrobial and cytotoxic activities of the ethanolic Origanum vulgare extract and it’s major constituents. Oxidative Med Cell Longev 2016; 9:1404505.
26. Lishuai M, Haixia C, Peng D i wsp. Anti-inflammatory and anticancer activities of extracts and compounds from the mushroom Inonotus obliquus. Food Chem 2013; 139:503-8.
27. Zheng W, Zhang M, Zhao Y i wsp. NMR-based metabonomic analysis on effect of light on production of antioxidant phenolic compounds in submerged cultures of Inonotus obliquus. Bioresource Technol 2009; 100:4481-7.
28. Sun Y, Yin T, Chen XH i wsp. In vitro antitumor activity and structure charakterization of ethanol extracts from Wild and cultivated Chaga medicinal mushroom, Inonotus obliquus (Pers.:Fr.) Pil?t (Aphyllophoromycetideae). International Journal of Medicinal Mushrooms 2011; 13(2):121-30.
29. Venturella G, Ferraro V, Cirlincione F i wsp. Medicinal Mushrooms: Bioactive compounds, use, and clinical trials. Int J Mol Sci 2021; 10:22(2):634.
30. Kim YO, Park HW, Kim JH i wsp. Anticancer effect and structural characterization of endo-polysaccharide from cultivated mycelia of Inonotus obliquus. Life Sci 2006; 79:72-80.
31. Youn MJ, Kim JK, Park SY i wsp. Potential anticancer properties of the water extract of Inontus obliquus by induction of apoptosis in melanoma B16-F10 cells. J Ethnopharmacol 2009; 121:221-8.
32. Hu H, Zhang Z, Lei Z i wsp. Comparative study of antioxidant activity and antioproliferative effect of hot water and ethanol extracts from the mushroom Inonotus obliquus. J Bioscence and Bioengineering 2009; 1:42-8.
33. Park HJ. CARI III Inhibits tumor growth in a melanoma-bearing mouse model through induction of G0/G1 cell cycle arrest. Molecules 2014; 19:14383-95.
34. Song FQ, Liu Y, Kong XS i wsp. Progress on understanding the anticancer mechanisms of medicinal mushroom: Inonotus obliquus. Asian Pacific J cancer prevention 2013; 14(3):1571-8.
35. Zhang L, Fan C, Liu S i wsp. Chemical composition and antitumor activity of polysaccharide from Inonotus obliquus. J Med Plants Res 2011; 5(7):1251-60.
36. Kim YO, Han SB, Lee HW i wsp. Immuno-stimulating effect of the endo-polysaccharide produced by submerged culture of Inonotus obliquus Life Sci 2005; 77:2438-56.
37. Fordjour E, Manful CF, Javed R i wsp. Chaga mushroom: a super-fungus with countless facets and untapped potential, Front. Pharmacol 2023; 14:1273786.
38. Su B, Yan X, Li Y i wsp. Effects of Inonotus obliquus polysaccharides on proliferation, invasion, migration, and apoptosis of Osteosarcoma Cells. Anal Cell Pathol (Amst) 2020; 17:4282036.
39. Fan L, Ding S, Ai L i wsp. Antitumor and immunomodulatory activity of water-soluble polysaccharide from Inonotus obliquus. Carbohydrate Polymers 2012; 90(2):870-4.
40. Nakata T, Taji S, Yamada T i wsp. New Lanostane Triterpenoids, Inonotsutriols D, and E from Inonotus Obliquus. Bull Osaka Univ Pharm Scien 2009.
41. Mazurkiewicz W, Rydel K, Pogocki D i wsp. Separation of an aqueous extract Inonotus obliquus (Chaga). a novel look at the efficiency of its influence on proliferation of A549 Human Lung Carcimona Cells. Acta Pol Pharm – Drug Res 2010; 67:397-406.
42. Kang JH, Jang JE, Mishra SK i wsp. Ergosterol peroxide from Chaga mushroom (Inonotus obliquus) exhibits anticancer activity by down-regulation of the β-catenin pathway in colorectal cancer. J Ethnopharmacol 2015; 173:303-12.
43. Lee JH, Hyun CK. Insulin-Sensitizing and beneficial lipid-metabolic effects of the water-soluble melanin complex extracted from Inonotus obliquus. Phytother Res 2014; 28:1320-8.
44. Youn MJ, Kim JK, Park SY i wsp. Chaga mushroom (Inonotus obliquus) induces Go/G1 arrest and apoptosis in human hepatoma HepG2 cells. World J Gastroenterol 2008; 14(4):511-7.
45. Chen C, Zheng W, Gao X i wsp. Aqueous extract of Inonotus obliquus (Fr.) Pilat (Hymenochaetaceae) significantly inhibits the growth of sarcoma 180 by inducing apoptosis. Am J Pharmacol Toxicol 2007; 2(1):10-7.
46. Burczyk J, Gawron A, Slotwinska M i wsp. Antimitotic activity of aqueous extracts of Inonotus obliquus. Boll Chim Farm 1996; 135(5):306-9.
47. Kim YR. Immunomodulatory Activity of the water extract from medicinal mushroom Inonotus obliquus. Mycobiol 2005; 33(3):158-62.
48. Ko S, Jin M, Pyo M. Inonotus obliquus extracts suppress antygen-specific IgE production through the modulation of Th1/Th2 cytokines in ovalbumin-sensitized mice. J Ethnopharmacol 2011; 137:1077-82.
49. Lu X, Chen H, Dong P i wsp. Phytochemical characteristics and hypoglycaemic activity of fraction from mushroom Inonotus obliquus. J Sci Food Agr 2010; 90:276-80.
50. Ichimura T, Otake T, Mori H i wsp. HIV-1 protease inhibition and anti-HIV effect of natural and synthetic water-soluble lignin-like substance. Biosci Biotechnol Biochem 1999; 63(12):2202-4.
51. Kukulianskaia TA, Kurchenko NV, Kurchenko VP i wsp. Fiziko-khimicheskie svo?stva melaninov, obrazuemykh chago? v prirodnykh usloviiakh i pri kul’tivirovanii [Physicochemical properties of melanins produced by Inonotus obliquus („chagi”) in the nature and the cultivated fungus]. Prikl Biokhim Mikrobiol 2002; 38(1):68-72.
52. Brandt CR, Piraino F. Mushroom antivirals. Recent Res Dev Antimicrob Agents Chemother 2000; 4:11-26.
53. Hyun KW, Jeong SC, Lee DH i wsp. Isolation and characterization of a novel platelet aggregation inhibitory peptide from the medicinal muchroom, Inonotus obliquus. Peptides 2006; 27:1173-8.
54. Yoon TJ, Lee SJ, Kim EY i wsp. Inhibitory effect of chaga mushroom extract on compound 48/80-induced anaphylactic shock and IgE production in mice. Int Immunopharmacol 2013; 15:666-70.
55. Park YM, Won JH, Kim YH i wsp. In vivo and in vitro anti-inflammatory and anti-nociceptive effects of the methanol extract of Inonotus obliquus. J Ethnopharmacol 2005; 101:120-8.
otrzymano: 2023-07-12
zaakceptowano do druku: 2023-08-04

Adres do korespondencji:
*dr n. rol. Marcin Szymański
Centrum Zaawansowanych Technologii Uniwersytet im. Adama Mickiewicza w Poznaniu
ul. Uniwersytetu Poznańskiego 10, 61-614 Poznań
e-mail: marcin.szymanski@amu.edu.pl

Postępy Fitoterapii 3/2023
Strona internetowa czasopisma Postępy Fitoterapii