Artykuły w Czytelni Medycznej o SARS-CoV-2/Covid-19

Poniżej zamieściliśmy fragment artykułu. Informacja nt. dostępu do pełnej treści artykułu tutaj
© Borgis - Postępy Fitoterapii 4/2014, s. 200-204
*Elżbieta Hołderna-Kędzia1, Tadeusz Wolski2,3, Bogdan Kędzia1
Działanie ekstraktów i zespołów roślinnych na grzyby chorobotwórcze w świetle badań własnych
The activity of extracts and plant complexes on pathogenic fungi on the base of own studies
1Instytut Włókien Naturalnych i Roślin Zielarskich w Poznaniu
Dyrektor Instytutu: prof. dr hab. Grzegorz Spychalski
2Katedra i Zakład Farmakognozji, Uniwersytet Medyczny w Lublinie
Kierownik Katedry i Zakładu: dr hab. n. farm. Grażyna Zgórka
3Katedra Warzywnictwa i Roślin Leczniczych, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie
Kierownik Katedry: prof. dr hab. Jan Dyduch
Summary
The aim of studies was the activity assessment of selected extracts and plant substances complexes on human pathogenic fungi as a potential medicines designed for use in dermatology. The studies shown that extracts and plant substance complexes have a significantly less potent against clinical yeasts as against dermatophytes. The conducted studies show the possibility of use of ethanol extract obtained from rhizome of Asarum europaeum, roots of Glycyrrhiza glabra, herbs of Hedera helix, roots of Inula helenium also leaves of Rosmarinus officinalis. From investigated plant substance complexes the strong activity (≤ 1000 μg/ml) against clinical yeasts and dermatophytes show the furanocumarins obtained from fruits of Heracleum sosnowskyi and Archangelica officinalis, but their practical use is problematic because of allergenic reaction possibility.
Częstość pojawiania się zakażeń dermatologicznych wywoływanych przez grzyby drożdżoidalne i dermatofity stale wzrasta. Jest to poważny problem terapeutyczny. Pomimo dużego postępu w leczeniu grzybic, jaki obserwuje się w ostatnich latach, liczba preparatów stosowanych w terapii tego rodzaju zakażeń jest dość ograniczona. Przyczyną takiego stanu jest wiele czynników, m.in. zróżnicowana budowa i inwazyjność grzybów patogennych dla człowieka oraz narastanie ich oporności na stosowane leki. Dlatego uzasadnione jest poszukiwanie nowych, skutecznych i dobrze tolerowanych preparatów zwalczających grzyby drożdżoidalne i dermatofity. Do takich środków leczniczych należą w większości preparaty pochodzenia roślinnego.
Cel pracy
Celem badań była ocena działania wybranych ekstraktów i zespołów substancji roślinnych na grzyby chorobotwórcze dla człowieka, jako potencjalnych leków przeznaczonych do wykorzystania w praktyce dermatologicznej.
Materiały i metody
Surowce i ekstrakty roślinne
W badaniach prowadzonych na przestrzeni ostatnich 25 lat wykorzystano 68 surowców roślinnych, z których sporządzono 78 ekstraktów i 12 zespołów substancji roślinnych. Najczęściej do sporządzania ekstraktów stosowano etanol. Ponadto ekstrakcję prowadzono za pomocą metanolu, butanolu, acetonu, heksanu, octanu metylu, eteru etylowego, wody, oleju roślinnego i ciekłego CO2 w stanie nadkrytycznym (tab. 1). Do otrzymywania ekstraktów i zespołów substancji roślinnych stosowano opisaną wcześniej metodykę (1-4).
Tabela 1. Działanie ekstraktów roślinnych na wzorcowe szczepy grzybów drożdżoidalnych i dermatofitów.
Rośliny użyte do sporządzania ekstraktówCzęść roślinyRozpuszczalnik użyty do ekstrakcjiC. albicans PCM 1409 PZH (μg/ml)M. gypseum ATCC 24102 (μg/ml)
Aesculus hippocastanum L.
Allium cepa L.
Arctium lappa L.
Arctostaphylos uva-ursi (L.) Spreng
Arctostaphylos uva-ursi (L.) Spreng
Arctostaphylos uva-ursi (L.) Spreng
Arctostaphylos uva-ursi (L.) Spreng
Asarum europaeum L.
Bergenia crassifolia (L.) Fritsch
Camelia sinensis (L.) O. Kuntze
Camptotheca acuminata L.
Cetraria islandica (L.) Ach.
Chelidonium majus L.
Chrysanthemum parthenium (L.) Bernh.
Cimicifuga europaea Schipez.
Cladonia uncialis (L.) F. H. Wigg
Cladonia gracilis (L.) Willd.
Curcuma longa L.
Diospyros kaki L.
Echinacea purpurea (L.) Moench
Eryngium maritimum L.
Galinsoga parviflora Car.
Glycyrrhiza glabra L.
Harpagophytom procumbens DC.
Hedera helix L.
Helichrysum arenarium L.
Humulus lupulus L.
Hypericum perforatum L.
Hypogymnia physodes (L.) Nyl.
Hypogymnia physodes (L.) Nyl.
Inula helenium L.
Kalanchoe gastonis Bonnieri
Kalanchoe longiflora Schltr. Ex J.M. Wood
Lepidium sativum L.
Lithospermum canescens (Michx.) Lehm
Mahonia aquifolium Nutt.
Melissa officinalis L.
Melissa officinalis L.
Nigella sativa L.
Nigella sativa L
Nigella sativa L.
Panax quinquefolium L.
Panax quinquefolium L.
Panax vietnamensis Ha et Grushr.
Parmelia sulcata Taylor
Pinus sylvestris L.
Pinus sylvestris L.
Platismatia glauca (L.) W.L. Culb.
Polyscias fruticosa (L.) Harms
Prunus spinosa L.
Prunus spinosa L.
Pyrus communis L.
nasienie
cebula
korzeń
owoc
owoc
liść
liść
kłącze
liść
liść
ziele
plecha
korzeń
koszyczek
ziele
plecha
plecha
kłącze
owoc
korzeń
korzeń
ziele
korzeń
korzeń
ziele
kwiat
szyszki
ziele
plecha
plecha
korzeń
ziele
ziele
ziele
korzeń
ziele
liść
liść
nasienie nasienie nasienie
liść
korzeń
korzeń
plecha
igliwie
igliwie
plecha
owoc
owoc
kwiat
liść
E
M
E
E
W
M
W
E
E
W
E
E
E
E
E
M
M
E
E
E
E
E
E
E
E
E
CC
H
A
M
E
E
E
E
E
E
E
W
M
EE
O
CC
CC
M
EE
OM
W
EE
E
EE
OM
E
750*
5000
12500
10000
5000
1500
1000
250
2500
10000
10000
750
5000
5000
500
250
750
15000
15000
5000
15000
5000
750
2500
250
5000
10000
1000
750
1000
100
7500
7500
100
25
500
2500
10000
750
2500
5000
15000
5000
7500
250
1000
1000
500
25000
10000
1000
5000
 
 
 
 
 
 
 
50
 
1000
1000
 
5000
100
 
 
 
2500
 
 
2500
1000
25
250
50
750
2,5
100
 
 
100
750
250
 
 
 
25
250
250
750
1000
 
1000
2500
 
 
 
 
7500
 
 
 
Rośliny użyte do sporządzania ekstraktówCzęść roślinyRozpuszczalnik użyty do ekstrakcjiC. albicans PCM 1409 PZH (μg/ml)M. gypseum ATCC 24102 (μg/ml)
Rheum palmatum L.
Rhodiola Kirilovii (Regel) Maxim
Rhodiola Kirilovii (Regel) Maxim
Rhodiola Kirilovii (Regel) Maxim
Rhodiola quadrifida
Rhodiola rosea L.
Rosmarinus officinalis L.
Rosmarinus officinalis L.
Rubia tinctorum L.
Rubus chamaemorus L.
Salvia miltiorrhiza Bunge
Salvia miltiorrhiza Bunge
Salvia officinalis L.
Salvia officinalis L.
Sambucus nigra L.
Sambucus nigra L.
Schefflera octophylla (Lour.) Harms
Solanum dulcamara L.
Solidago graminifolia L.
Tinospora cordifolia (Willd.) Miers.
Usnea barbata (L.) Wiggers
Vaccinium vitis-idaea L.
Xanthium strumarium L.
Xanthium strumarium L.
Xanthium strumarium L.
Ziziphus jujuba Mill
Amfoterycyna B – antybiotyk przeciwgrzybiczy
korzeń
korzeń
korzeń
korzeń
korzeń
korzeń
liść
liść
korzeń
pęd
korzeń
korzeń
korzeń
liść
owoc
owoc
ziele
liść
kwiat
korzeń
plecha
owoc
ziele
korzeń
owoc
owoc
E
B
W
E
E
E
E
H
E
M
E
A
E
E
W
OM
M
E
M
E
E
E
CC
CC
CC
W
750
10000
7500
750
2500
1000
25
 
12500
2500
10000
 
250
75
15000
1000
7500
500
2500
10000
10000
12500
5000
15000
15000
15000
1000
 
2500
2500
750
1000
750
25
250
 
1000
2500
25
 
10
 
 
5000
 
750
1000
 
 
1000
1000
500
 
10
*Najmniejsze stężenia ekstraktów roślinnych hamujące wzrost grzybów wzorcowych (μg/ml)
A – aceton, B – butanol, CC – ciekłe CO2 w stanie nadkrytycznym, E – etanol, EE – eter etylowy, H – heksan, M – metanol, O – olej, OM – octan metylu, W – woda.
Drobnoustroje
W badaniach użyto 2 wzorcowe szczepy grzybów. Przedstawicielem grzybów drożdżoidalnych był szczep Candida albicans PCM 1409 PZH, pochodzący z kolekcji Polish Collection Microorganisms, a dermatofitów szczep Microsporum gypseum ATCC 24102 pochodzący z kolekcji American Test Culture Collection. Kliniczne szczepy grzybów drożdżoidalnych i dermatofitów pochodziły od chorych hospitalizowanych w Państwowym Szpitalu Klinicznym nr 5 w Poznaniu.
Przeprowadzenie badań
Ekstrakty i zespoły substancji roślinnych rozpuszczano w dimetylosulfotlenku (DMSO) w stężeniu 100 mg/ml i przygotowywano z nich rozcieńczenia w płynnym podłożu Sabouraud 2% dextrose broth firmy Merck w stężeniach od 10 do 1000 μg/ml. W razie potrzeby przygotowywano dodatkowo roztwory badanych ekstraktów i zespołów substancji roślinnych w DMSO w stężeniu 200 mg/ml, z których sporządzano roztwory w podłożu Sabourauda w granicach stężeń od 1000 do 25 000 mg/ml. Podobnie w razie potrzeby przygotowywano roztwory badanych substancji w podłożu Sabourauda w granicach stężeń od 1 do 10 μg/ml. Do odpowiednich rozcieńczeń badanych substancji o objętości 1 ml dodawano po 0,1 ml rozcieńczonych hodowli szczepów, zawierających 105-106 komórek (grzyby drożdżoidalne) lub elementów morfotycznych grzybni (dermatofity) w 1 ml. Posiewy inkubowano przez okres 2 dni (grzyby drożdżoidalne) lub 5 dni (dermatofity) w temp. 37°C. Następnie określano najmniejsze stężenia hamujące (MIC – Minimal Inhibitory Concentration) badanych ekstraktów i zespołów substancji roślinnych. Jako substancji referencyjnej użyto antybiotyku przeciwgrzybiczego – amfoterycyny B.
Wyniki i ich omówienie

Powyżej zamieściliśmy fragment artykułu, do którego możesz uzyskać pełny dostęp.

Płatny dostęp tylko do jednego, POWYŻSZEGO artykułu w Czytelni Medycznej
(uzyskany kod musi być wprowadzony na stronie artykułu, do którego został wykupiony)

Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu wraz z piśmiennictwem , należy wprowadzić kod:

Kod (cena 19 zł za 7 dni dostępu) mogą Państwo uzyskać, przechodząc na tę stronę.
Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.

 

 

Płatny dostęp do wszystkich zasobów Czytelni Medycznej

Aby uzyskać płatny dostęp do pełnej treści powyższego artykułu wraz z piśmiennictwem oraz WSZYSTKICH około 7000 artykułów Czytelni, należy wprowadzić kod:

Kod (cena 49 zł za 30 dni dostępu) mogą Państwo uzyskać, przechodząc na tę stronę.
Wprowadzając kod, akceptują Państwo treść Regulaminu oraz potwierdzają zapoznanie się z nim.

otrzymano: 2014-09-15
zaakceptowano do druku: 2014-10-11

Adres do korespondencji:
*prof. dr hab. Bogdan Kędzia
Instytut Włókien Naturalnych i Roślin Zielarskich
ul. Libelta 27, 61-707 Poznań
tel. +48 (61) 665-95-50, fax: (61) 665-95-51
e-mail: bogdan.kedzia@iwnirz.pl

Postępy Fitoterapii 4/2014
Strona internetowa czasopisma Postępy Fitoterapii